Инженерная энзимология. Механизмы инактивации ферментов

Содержание

Слайд 2

Механизмы инактивации ферментов 1. Изменение первичной структуры: 1.1. Разрыв полипептидной цепи:

Механизмы инактивации ферментов
1. Изменение первичной структуры:
1.1. Разрыв полипептидной цепи:
Жесткие условия (длительное

кипячение в HCl) – гидролиз до отдельных ам-т.
При нагревании до 100 °С (pH 7-8), гидролиз пептидных связей незначителен.
Наиболее чувствительными к высокотемпературному гидролизу являются пептидные связи, образованные остатками аспарагиновой кислоты.
Протеазы (бактериальное загрязнение, автолиз).
Слайд 3

Решение: В литературе практически отсутствуют примеры удачной реактивации подобным образом инактивированных ферментов.

Решение:
В литературе практически отсутствуют примеры удачной реактивации подобным образом инактивированных ферментов.

Слайд 4

1.2.Окисление функциональных групп фермента SH-группы цистеина и индольные фрагменты триптофана, при

1.2.Окисление функциональных групп фермента
SH-группы цистеина и индольные фрагменты триптофана, при повышенной

температуре, могут окисляться (сульфокси- соединения цистеина (SOH, SO2H) и образовываться продукты раскрытия индольного кольца триптофана.
Слайд 5

Решение: Реактивировать с помощью восстанавливающих агентов, в частности низкомолекулярных тиолов (например, цистеин или дитиотрейтол) .

Решение:
Реактивировать с помощью восстанавливающих агентов, в частности низкомолекулярных тиолов (например, цистеин

или дитиотрейтол) .
Слайд 6

1.3. Расщепление дисульфидных связей Вызывают : Тиолы и другие восстановленные соединений

1.3. Расщепление дисульфидных связей
Вызывают : Тиолы и другие восстановленные соединений серы,

например Na2SO3, Na2S2O3.
Продуктом восстановления дисульфидной связи (S-S) является:
1) тиольная форма (белок–SH)
2) смешанный дисульфид тиольной формы белка с восстанавливающим реагентом, например белок–S–SO3).
Слайд 7

1.3. Расщепление дисульфидных связей Щелочной гидролиз цистеина →дегидроаланин→ Благодаря нуклеофильным свойствам

1.3. Расщепление дисульфидных связей
Щелочной гидролиз цистеина →дегидроаланин→ Благодаря нуклеофильным свойствам взаимодействует

с NH2-группами лизина и SH- цистеина →лизиноаланин и лантионин.
Для полной деструкции всех S–S связей требу-
ются достаточно жесткие условия (0,1–1М щелочь, 100 °С).
Однако деструкция наиболее реакционноспособных S–S связей может проходить в достаточно мягких условиях – например, при температурах 60–80 °С и слабощелочных значениях рН.
Cледует учитывать при использовании ферментов в качестве добавок к моющим средствам.
Слайд 8

Решение: Добавление в среду тиолов приведет к расщеплению смешанного дисульфида и последующему образованию правильной S–S связи

Решение:
Добавление в среду тиолов приведет к расщеплению смешанного дисульфида и последующему

образованию правильной S–S связи
Слайд 9

1.4. Химическая модификация каталитических SH-групп. Катионы тяжелых металлов (Hg, Pb и

1.4. Химическая модификация каталитических SH-групп.
Катионы тяжелых металлов (Hg, Pb и

Cu) связываются с SH-групп активного центра фермента
↓ Образование соответствующих меркаптидов

Фермент инактивируется
Слайд 10

1.5. Фосфорилирование белков in vivo. Под действием фосфорилазы и фосфатазы, содержащихся

1.5. Фосфорилирование белков in vivo.
Под действием фосфорилазы и фосфатазы, содержащихся

в полуочищенных ферментативных препаратах в виде примесей

Фосфорная кислота связывается с ОН-группами серина и треонина.

Конформационные изменения в белковой молекуле

инактивацию фермента.
Слайд 11

Решение: В литературе практически отсутствуют примеры удачной реактивации подобным образом инактивированных ферментов.

Решение:
В литературе практически отсутствуют примеры удачной реактивации подобным образом инактивированных ферментов.

Слайд 12

1.6. Дезаминирование остатков аспарагина. При температурах (порядка 100 °С) и рН

1.6. Дезаминирование остатков аспарагина.
При температурах (порядка 100 °С) и рН

(порядка 4,0–5,0) происходит дезаминирование остатков аспарагина.

инактивации фермента.
Слайд 13

Решение: В литературе практически отсутствуют примеры удачной реактивации подобным образом инактивированных ферментов.

Решение:
В литературе практически отсутствуют примеры удачной реактивации подобным образом инактивированных ферментов.

Слайд 14

1.7. Радиационная инактивация ферментов γ-облучение и УФ-свет Воздействуют на функциональные группы

1.7. Радиационная инактивация ферментов
γ-облучение и УФ-свет
Воздействуют на функциональные группы ферментов, пептидные

связи и SH-группы остатков цистеина.
Слайд 15

2. Агрегация Наблюдается при повышенной температуре, при экстремальных значениях рН, в

2. Агрегация
Наблюдается при повышенной температуре, при экстремальных значениях рН, в присутствии

некоторых химических соединений.
Чем выше концентрация, тем быстрее идет агрегация.
Гидрофобные взаимодействия и водородные связи, возможно образование дисульфидных мостиков между отдельными белковыми молекулами
Слайд 16

Решение: Необходимо разрушить межмолекулярные ковалентные и нековалентные контакты c помощью концентрированных

Решение:
Необходимо разрушить межмолекулярные ковалентные и нековалентные контакты c помощью концентрированных растворов

мочевины и гуанидинхлорида, экстремальных значений рН.
Если при агрегации ферментов образовались межмолекулярные S-S -мостики, в среду вносят в относительно невысоких концентрациях (мкмоль/л) тиолсодержащие реагенты (например, цистеин или дитиотрейтол).
При таких концентрациях внутримолекулярные S–S связи в белке, как правило, не затрагиваются.
Слайд 17

3. Инактивация ферментов поверхностным натяжением Поверхностное натяжение на границе раздела между

3. Инактивация ферментов поверхностным натяжением
Поверхностное натяжение на границе раздела между воздухом

и чистой водой составляет 80 дин/см.
Пенообразование вызывает денатурацию ферментов, адсорбированных на границе раздела фаз.
Слайд 18

Решение: Добавление ПАВ снижает поверхностное натяжение до 1 дин/см.

Решение:
Добавление ПАВ снижает поверхностное натяжение до 1 дин/см.

Слайд 19

4. Сорбция белка на стенках реакционного сосуда Сорбция за счет нековалентных

4. Сорбция белка на стенках реакционного сосуда
Сорбция за счет нековалентных взаимодействий

приводит к уменьшению концентрации фермента в растворе.
Необходимо учитывать при работе с разбавленными белковыми растворами (концентрация 10-8–10-10 моль/л).
Под влиянием денатурирующих факторов способность белков сорбироваться на стенках реакционного сосуда может возрастать.
Слайд 20

Решение: Десорбция фермента со стенок реакционного сосуда достигается за счет разрушения

Решение:
Десорбция фермента со стенок реакционного сосуда достигается за счет разрушения неспецифических

взаимодействий между
белком и сорбционными центрами на поверхности сосуда.
Можно использовать экстремальные значения рН, концентрированные растворы мочевины или гуанидинхлорида.
Слайд 21

5. Диссоциация олигомерных белков на субъединицы Вызывают: Мочевина, детергенты, кислоты или

5. Диссоциация олигомерных белков на субъединицы
Вызывают: Мочевина, детергенты, кислоты или же

нагревание.
Приводят к:
конформационным изменениям отдельных субъединиц;
агрегации субъединиц;
диссоциации кофакторов из активных центров;
модификации функциональных групп, которые в олигомерном белке были экранированы от контакта с растворителем.
Слайд 22

6. Десорбция кофактора из активного центра фермента Вызывает: нагревание, действие хелаторов,

6. Десорбция кофактора из активного центра фермента
Вызывает: нагревание, действие хелаторов, диализ
Если

диссоциация кофактора сопровождается значительными конформационными сдвигами или химической модификацией важных
функциональных групп → фермент инактивируется необратимо.
Если при этом не произошло существенного изменения белковой конформации, то добавление в среду избытка кофактора приводит к реактивации фермента.
Слайд 23

Регенерация кофакторов Способы регенерации: Ферментативный (методы с использованием со- пряженных субстратов

Регенерация кофакторов
Способы регенерации:
Ферментативный (методы с использованием со-
пряженных субстратов или ферментов)
Неферментативный

(химические и электрохимические подходы)
Слайд 24

Ферментативный способ Использование сопряженных субстратов. В систему вводят избыточное количество сопряженного

Ферментативный способ
Использование сопряженных субстратов.
В систему вводят избыточное количество сопряженного субстрата того

же фермента:
Пример: при работе алкогольдегидрогеназы расходуется НАДН.
Слайд 25

Ферментативный способ Использование сопряженных субстратов. Недостатка: • используются высокие концентрации сопряженного

Ферментативный способ
Использование сопряженных субстратов.
Недостатка:
• используются высокие концентрации сопряженного субстрата, так как

равновесие реакции сильно сдвинуто в сторону образования спирта;
усложняет процедуру выделения основного продукта из реакционной смеси.
Слайд 26

Ферментативный способ 2. Использование сопряженных ферментативных реакций В систему, дополнительно вводят

Ферментативный способ
2. Использование сопряженных ферментативных реакций
В систему, дополнительно вводят фермент 2,

функционирование которого обеспечивает регенерацию кофермента.
Используемые в системе ферменты должны иметь разную субстратную специфичность
Слайд 27

Неферментативные способы Химические методы. Используются дитионит натрия и некоторые соли пиридиния:

Неферментативные способы
Химические методы.
Используются дитионит натрия и некоторые соли пиридиния:
+ Низкая

стоимость.
могут ингибировать отдельные ферменты.
Флавиновые коферменты
Слайд 28

Неферментативные способы 2. Электрохимические методы. Прямое электрохимическое восстановление или окисление. “-”

Неферментативные способы
2. Электрохимические методы.
Прямое электрохимическое восстановление или
окисление.
“-” появления в процессе регенерации

ферментативно неактивных форм кофермента, например в результате его димеризации.
Слайд 29

СТАБИЛИЗАЦИЯ ФЕРМЕНТОВ В БИОТЕХНОЛОГИЧЕСКИХ СИСТЕМАХ

СТАБИЛИЗАЦИЯ ФЕРМЕНТОВ В БИОТЕХНОЛОГИЧЕСКИХ СИСТЕМАХ

Слайд 30

Проблемы возникающие при использовании ферментов в биотехнологических процессах: Повышенные температуры Экстремальные

Проблемы возникающие при использовании ферментов в биотехнологических процессах:
Повышенные температуры
Экстремальные значения pH


Высокие концентрации органических растворителей или ПАВ.
Невозможность многократно использовать фермент.
Сложность при разделении фермента от продукта.
Слайд 31

Основные подходы для стабилизации ферментов : Добавление стабилизирующих веществ в среду,

Основные подходы для стабилизации ферментов :
Добавление стабилизирующих веществ в среду, в

которой хранится фермент или проводится ферментативная реакция.
2. Химическая модификация фермента.
3. Иммобилизация фермента.
Слайд 32

Стабилизация ферментов с помощью: Субстратов или их аналогов: Фермент-субстратный комплекс часто

Стабилизация ферментов с помощью:
Субстратов или их аналогов:
Фермент-субстратный комплекс часто

более устойчив, чем свободный фермент.
Пример: Лактатдегидрогеназа в присутствии лактата более термоустойчив.
Слайд 33

Стабилизация ферментов с помощью: 2. Органических растворителей: Многоатомные спирты стабилизируют некоторые

Стабилизация ферментов с помощью:
2. Органических растворителей:
Многоатомные спирты стабилизируют некоторые ферменты

за счет повышения устойчивости внутримолекулярных водородных связей белка.
Пример: Химотрипсин в присутствии 50–90 % глицерина более устойчив к протеолизу
Слайд 34

Стабилизация ферментов с помощью: 3. Солей: При низких концентрациях солей (

Стабилизация ферментов с помощью:
3. Солей:
При низких концентрациях солей (<0,1M) катионы Са2+,

Zn2+, Mn2+,Fe2+ и др. могут специфично взаимодействовать с металлопротеинами. Некоторые из них - кофакторы.
Са2+ способен стабилизировать третичную структуру ряда белков благодаря образованию ионных связей с двумя различными аминокислотными остатками.
Пример: у α-Амилазы (из bacillus caldolyticus)
Са2+ значительно повышает термическую устойчивость.
Слайд 35

Слайд 36

Химическая модификация фермента 1. Фермент принимает более стабильную конформацию. 2. Введение

Химическая модификация фермента
1. Фермент принимает более стабильную конформацию.
2. Введение в белок

новых функциональных групп приводит к образованию дополнительных стабилизирующих водородных связей или солевых мостиков.
3. При использовании неполярных соединений усиливаются гидрофобные взаимодействия.
4. Модификация гидрофобных областей поверхности белка гидрофильными соединениями уменьшает площадь неблагоприятного контакта внешних неполярных остатков с водой.
Пример: глутаровый альдегид
Слайд 37

Иммобилизация фермента позволяет: Повысить устойчивость фермента (нагреванию, автолизу, действию агрессивных сред

Иммобилизация фермента позволяет:
Повысить устойчивость фермента (нагреванию, автолизу, действию агрессивных сред и

т. д)
Многократно использовать фермент
Отделять фермент от реагентов и продуктов реакции.
Прерывать реакцию в нужный момент.
Слайд 38

Иммобилизованные ферменты – это препараты ферментов, молекулы которых связаны с носителем,

Иммобилизованные ферменты – это препараты ферментов, молекулы которых связаны с носителем,

сохраняя при этом полностью или частично свои каталитические свойства.
Методы иммобилизации:
Химические
Физические
Слайд 39

Методы иммобилизации: В качестве носителей могут применяться: 1)Органические материалы: 1.1) природные

Методы иммобилизации:
В качестве носителей могут применяться:
1)Органические материалы:
1.1) природные (полисахариды, белки, липиды)


1.2) синтетические полимерные носители
2) Неорганические материалы (матрицы на основе силикагеля, глины, керамики, природных минералов и т. д.)
Слайд 40

Методы физической иммобилизации: 1) адсорбция фермента на нерастворимом носителе в результате

Методы физической иммобилизации:
1) адсорбция фермента на нерастворимом носителе в результате электростатических,

гидрофобных, вандер-ваальсовых и др. взаимодействий;
2) включение фермента в полупроницаемую капсулу, в полупроницаемую мембрану;
3) механическое включение фермента в гелевые структуры;
4) Включение в двухфазную систему.
Слайд 41

Методы физической иммобилизации: 1)адсорбция фермента на нерастворимом носителе Достигается путем контакта водного раствора фермента с носителем.

Методы физической иммобилизации:
1)адсорбция фермента на нерастворимом носителе
Достигается путем контакта водного раствора

фермента с носителем.
Слайд 42

Методы физической иммобилизации: 1)адсорбция фермента на нерастворимом носителе Факторы влияющие на

Методы физической иммобилизации:
1)адсорбция фермента на нерастворимом носителе
Факторы влияющие на адсорбцию:
Удельная поверхность

и пористость носителя
Значение рН (на не ионообменниках мах адсорбция в изоэлектрической точке белка)
Ионная сила раствора (возрастание ионной силы –десорбция фермента, но иногда обратная ситуация “высаливание”)
Концентрация фермента.
Температура ( с одной стороны денатурация, с другой ускоренная диффузия)
Слайд 43

Методы физической иммобилизации: 1)адсорбция фермента на нерастворимом носителе Преимущества: Относительная простота

Методы физической иммобилизации:
1)адсорбция фермента на нерастворимом носителе
Преимущества:
Относительная простота методики
Доступность носителей
Недостатки:
Недостаточная прочность

связывания
Многие носители биодеградируемы
Слайд 44

Методы физической иммобилизации: 2) включение фермента в полупроницаемую капсулу, в полупроницаемую мембрану

Методы физической иммобилизации:
2) включение фермента в полупроницаемую капсулу, в полупроницаемую мембрану

Слайд 45

Методы физической иммобилизации: 2) включение фермента в полупроницаемую капсулу, в полупроницаемую

Методы физической иммобилизации:
2) включение фермента в полупроницаемую капсулу, в полупроницаемую мембрану
Преимущества:
Относительная

простота методики
Защита от микроорганизмов
Нет диффузионных ограничений (т.к. отношение поверхности к площади велико и толщина мембраны невелика)
Недостатки:
Биодеградируемы
Не применим для высокомолекулярных субстратов
Слайд 46

Методы физической иммобилизации: 3) механическое включение фермента в гелевые структуры Фермент

Методы физической иммобилизации:
3) механическое включение фермента в гелевые структуры
Фермент включается в

трехмерную сетку полимерных цепей, образующих гель.
Слайд 47

Методы физической иммобилизации: 3) механическое включение фермента в гелевые структуры Необходимо

Методы физической иммобилизации:
3) механическое включение фермента в гелевые структуры
Необходимо учитывать:
Соответствие размера

пор размеру фермента.
Природа матрицы (т.к. она создает микроокружение для фермента, может создавать рН отличное от рН раствора и повышать сродство субстрата к матрице, что повышает скорость ферментативной реакции )
Слайд 48

Методы физической иммобилизации: 3) механическое включение фермента в гелевые структуры Преимущества:

Методы физической иммобилизации:
3) механическое включение фермента в гелевые структуры
Преимущества:
Относительная простота методики
Повышенная

механическая, химическая и тепловая стойкость матриц.
3) Происходит стабилизация фермента
4) Фермент защищен от бактериального повреждения
Недостатки:
1) Не применим для высокомолекулярных субстратов
Слайд 49

Методы физической иммобилизации: 4) Включение в двухфазную систему Фермент растворим только

Методы физической иммобилизации:
4) Включение в двухфазную систему
Фермент растворим только в одной

из фаз, а продукт - в другой
Позволяет работать в высокомолекулярными субстратами.
Слайд 50

Методы химической иммобилизации: Образовании ковалентных связей между ферментом и носителем. Преимущества:

Методы химической иммобилизации:
Образовании ковалентных связей между ферментом и носителем.
Преимущества:
1) Высокая прочность

конъюгата
2) Можно повышать стабильность фермента
Слайд 51

При иммобилизации ферментов необходимо соблюдать следующие условия: 1. Активные группы матрицы

При иммобилизации ферментов необходимо соблюдать следующие условия:
1. Активные группы матрицы не

должны блокировать каталитический центр фермента.
2. Иммобилизации не должны приводить к потере активности фермента.
Слайд 52

Весьма перспективным является использование в качестве биокатализаторов иммобилизованных клеток. Т.к. можно

Весьма перспективным является использование в качестве биокатализаторов иммобилизованных клеток.
Т.к. можно избежать:
дорогостоящие

стадии выделения и очистки ферментов
2) необходимости их последующей стабилизации
Слайд 53

Термозимы Стабильны в условиях высокой температуры, высоких концентраций солей и экстремальных

Термозимы
Стабильны в условиях высокой температуры, высоких концентраций солей и экстремальных значений

рН.
Гипертермофильные микроорганизмы, встречающиеся среди Archaea и Bacteria, живут при температурах 80–100 °С.
Слайд 54

Механизмы ответственны за термоустойчивость ферментов у термозимов: Между мезофильными и термофильными

Механизмы ответственны за термоустойчивость ферментов у термозимов:
Между мезофильными и термофильными версиями

ферментов - высокая степень гомологии последовательности и структуры.
Так, последовательности термостабильных дегидрогеназ из Pyrococcus и Thermotoga на 35 и 55% соответственно идентичны последовательности мезофильной дегидрогеназы из Clostridium.
Слайд 55

Было обнаружено, что дегидрогеназа из Pyrococcus furiosus (Tm == 105 °C)

Было обнаружено, что дегидрогеназа из Pyrococcus furiosus (Tm == 105 °C)

содержит 35 изолейцинов, в то время как дегидрогеназы из Thermotoga maritima (Tm = 95 °C) и Clostridium symbiosum (Tm = 55 °C) только 21 и 20 изолейцинов соответственно.
Термостабильные ферменты содержат меньше глицина: Cs дегидрогеназа содержит 48 остатков глицина, а дегидрогеназы из Tm и Pf только
39 и 34 глицина соответственно.
Больше изолейцина и меньше глицина.
Слайд 56

Возросшая термостабильность коррелирует: с увеличением жесткости белковой структуры за счет уменьшения

Возросшая термостабильность коррелирует:
с увеличением жесткости белковой структуры за счет уменьшения содержания

остатков глицина,
с улучшением гидрофобных контактов в ядре дегидрогеназы из Pf в результате замены валина изолейцином. (В результате сайт-направленного мутагенеза приводящего к замене изолейцина на валин термостабильность мутантов уменьшалась).
Слайд 57

Механизмы стабилизации: • минимизация доступной площади гидрофобной поверхности белка; • оптимизация

Механизмы стабилизации:
• минимизация доступной площади гидрофобной поверхности белка;
• оптимизация упаковки атомов

белковой молекулы (минимизация отношения поверхность/объем);
• оптимизация распределения зарядов (достигается благодаря устранению отталкивающих взаимодействий, а также в результате организации взаимодействий между зарядами в своеобразную сеть)
Уменьшение количества впадин
Слайд 58

Применение ферментов из экстремофилов Современные технологии молекулярной биологии и генной инженерии

Применение ферментов из экстремофилов
Современные технологии молекулярной биологии и генной инженерии позволяет:
1)

получать достаточные количества ферментов из экстремофилов для их последующего
анализа и практического применения.
2)клонирование и экспрессия этих ферментов в мезофильных организмах.
Слайд 59

Применение ферментов из экстремофилов: Крахмал используется для производства сахаров. Сначала процесс

Применение ферментов из экстремофилов:
Крахмал используется для производства сахаров. Сначала процесс ведется

при (95–105 °С) и при значениях рН 6–6,5.
На следующем этапе температура снижается до 60°С и рН=4,5.
Использование термостабильных ферментов (α-амилазы, глюкоамилазы, ксилозоизомеразы), выделенных из гипертермофилов, позволит:
проводить процесс в одну стадию и при одних и тех же условиях
отказаться от дорогостоящих ионообменников
Слайд 60

Применение ферментов из экстремофилов: Наиболее термостабильные α-амилазы были обнаружены у archaea

Применение ферментов из экстремофилов:
Наиболее термостабильные α-амилазы были обнаружены у archaea Pyrococcus

woesei,
Pyrococcus furiosus, Desulfurococcus mucosus, Pyrodictium abyssi и Staphylothermus
marinus. Гены амилазы из Pyrococcus sp. были
клонированы и экспрессированы в E.coli и Bacillus subtilis.
Слайд 61

Применение ферментов из экстремофилов: Протеолитические ферменты Сериновые щелочные протеиназы широко используются

Применение ферментов из экстремофилов:
Протеолитические ферменты
Сериновые щелочные протеиназы широко используются в качестве

добавок к моющим средствам.
Протеиназы из экстремофилов сохраняют нативность при высоких температурах, в присутствии высоких концентраций детергентов и других денатурирующих агентов. Pyrococcus, Thermococcus, Staphylothermus, Desulfurococcus и Sulfolobus. Максимальную активность эти ферменты проявляют при температурах
от 90 до 110 °С и значениях рН от 2 до 10
Слайд 62

Применение ферментов из экстремофилов: ДНК-полимеразы Термостабильные ДНК-полимеразы используются в ПЦР и

Применение ферментов из экстремофилов:
ДНК-полимеразы
Термостабильные ДНК-полимеразы используются в ПЦР и играют важную

роль в генной инженерии. Термостабильные полимеразы были обнаружены у гипертермофилов Pyrococcus furiosus и Pyrococcus litoralis, а также у термофилов Thermus aquaticus.