Содержание
- 2. Полимеразная цепная реакция (ПЦР) ПЦР – это метод лабораторной диагностики, направленный на выявление специфического участка ДНК
- 3. Этапы ПЦР Денатурация ДНК (95оС) Отжиг праймеров (55-65оС) Полимеризация цепей ДНК (72оС)
- 4. Цикличность реакции амплификации N=1 N=40 N – количество циклов ПЦР
- 5. Экспоненциальный характер течения ПЦР
- 7. Основные характеристики ПЦР Высокая чувствительность, основанная на экспоненциальном принципе накопления продукта. Высокая специфичность, основанная на выявлении
- 8. Характеристика тест-систем на основе ПЦР Высокая специфичность, основанная на выявлении уникальных для микроорганизма участках генетического материала
- 9. Преимущества метода ПЦР Прямой метод обнаружения возбудителя Широкий спектр биологического материала Кровь, сыворотка Моча Фекалии Соскобы,
- 10. Особенности применения метода ПЦР Адекватный материал Где искать? Когда искать? Хранение, транспортировка материала Как хранить? Как
- 11. Экстракция нуклеиновых кислот (НК) - получение очищенного препарата НК
- 12. Гемоглобин Гепарин Иммуноглобулины Билирубины и желчные кислоты Слизь (мукополисахариды) Гормоны Ферменты Ионы металлов (Ca2+, Fe3+) Соли
- 13. Быстрые в исполнении, НО! Низкая эффективность очистки от ингибиторов Нет концентрирования Непригодны для выделения РНК!!! Методы
- 14. Сложные – сорбция ДНК/РНК на носителе/ преципитация НК и удаление ингибиторов промыванием Длительные и трудоемкие (по
- 15. Сложные методы экстракции нуклеиновых кислот Лизис хаотропными агентами (н-р. гуанидинтиоцианат) ⇒ сорбция ДНК/РНК на силикагеле или
- 16. Экстракция ДНК/РНК сорбцией на силикагеле Отмывка от солей этанолом Элюция РНК/ДНК Водой или TE-буфером Подсушивание при
- 17. Схема экстракции НК сорбцией на колонках Лизис Сорбция НК Удаление примесей Элюция НК Перенос НК в
- 18. Методы одновременной экстракции ДНК/РНК
- 19. Контроль взятия и сохранности материала (эндогенный) Потери ДНК/РНК (эффективность экстракции) Полнота удаления ингибиторов Контроль за работой
- 20. РНК/ДНК Эндогенный – экзогенный Флуоресцентные - электрофоретические Общая классификация (ВК)
- 21. РНК и ДНК контроли
- 23. Экстракция НК э/ф детекция вко В- образцы Использование экзогенного ВК при проведении ПЦР-исследования В- В- К-
- 24. Конкурентный ВКО (амплификация одинаковыми праймерами со спецификой) А А В пко вко пко вко Отличается по
- 25. Неконкурентный ВКО (амплификация разными праймерами со спецификой) пко вко пко вко Электрофоретическая детекция Флуоресцентная детекция
- 26. Способы детекции ВК для ЭФ и флуоресцентных методов пко вко пко вко ВКО пко Электрофоретическая детекция
- 27. Адекватный вид материала Зачем искать? Где искать? Когда искать? Правильное взятие материала Хранение и транспортировка по
- 28. Цель Мониторинг Скрининг Выявление этиологического агента другие Патогенез Где искать? Когда искать? Возраст и пол Вид
- 29. Асептика и антисептика Одноразовые пробирки Индивидуальные инструменты Количество, достаточное для повторного исследования Понятная маркировка Правильная упаковка
- 30. Кровь, сыворотка/плазма Материал из респираторного тракта Урогенитальные мазки Сперма Фекалии, помет, ректальные мазки Молоко Корма Вода
- 31. Цельная кровь Отбор в одноразовые пробирки ЭДТА или цитратом натрия Гемолитик РИБО-сорб (РНК), РИБО-преп (РНК+ДНК), ДНК-сорб-В(ДНК)
- 32. Кровь Биохимия, серология, ИФА Пробирка покрыта тонкодисперсными частицами диоксида кремния, которые ускоряют процесс образования кровяного сгустка
- 35. Игла прокалывает резиновую крышку пробирки. Образуется канал между пробиркой и полостью вены. При извлечении пробирки резиновая
- 36. КРС Лошади Из яремной вены (v. jugularis) Кровь берут в нижней трети шеи Из хвостовой вены
- 37. Свиньи Из ушной вены (v. auricularis) Из яремной вены (v.jugularis) Из хвостовой вены (v .сoccygea) Из
- 38. Мелкие домашние животные из лучевой (v. radialis) вены из бедренной (v. femoralis) вены Можно комплектовать пробирку
- 39. Материал из респираторного тракта Мазки из рото- и носоглотки Стерильный одноразовый зонд из акрона или вискозы
- 41. Материал из респираторного тракта Трахеобронхиальный лаваж – 20 мл Бронхоальвеолярный лаваж – 20 мл Стерильные полипропиленовые
- 42. Материал из урогенитального тракта Мазки, соскобы РИБО-сорб, РИБО-преп, ДНК-сорб-В – 100 мкл Смывы с препунция РИБО-сорб,
- 43. Фекалии, помет Не менее 5 гр в стерильном контейнере 10-20% суспензия РИБО-сорб, РИБО-преп, ДНК-сорб-В – 100
- 44. Особенности предобработки материала методом экспресс-фильтрации Суспензия фекалий Фильтрат суспензии фекалий Фильтрат суспензии фекалий рекомендовано применять для
- 45. Патматериал Фрагменты тканей и органов 1х1х1 см Отбор из очага поражения Формирование усредненной пробы Гомогенизация РИБО-сорб,
- 46. Транспортировка и хранение Транспортировка В течение суток при температуре +2 - +8 без заморозки Более суток
- 47. РАБОТА НАД ОШИБКАМИ
- 48. Ошибки преаналитического этапа Ошибки аналитического этапа Ошибки постаналитического этапа
- 49. Ошибки преаналитического этапа Место взятия биологического материала Правильность взятия биологического материала Обработка биологического материала Хранение биологического
- 50. Взятие биологического материала Неверное определение места предполагаемой локализации инфекционного процесса, особенно для микроорганизмов, имеющих тропность ко
- 51. Взятие биологического материала Материал должен содержать максималь-ную концентрацию микроорганизмов Минимальное количество примесей, спо-собных ингибировать ПЦР (слизь,
- 52. Обработка биологического материала Необходимо использовать антикоагулянты Присутствие гепарина в крови (антикоагу-лянтная терапия) может привести к ложно-отрицательному
- 53. Хранение биологического материала Разрушение РНК и ДНК возбудителей при нарушении сроков хранения и условий транспортировки Замораживание
- 54. Нормативная документация СП 1.2.036-96 СП 1.3.1285-03 СП 1.3.2322-08
- 55. Ошибки аналитического этапа Выбор системы пробоподготовки Технологические ошибки
- 56. Выбор системы пробоподготовки Неправильный выбор системы пробоподготовки Использование экспресс-методов на «сложных» образцах, может привести к ложноотрицатель-ным
- 57. Технологические ошибки Электрофоретическая детекция Риск принять неспецифические фрагменты за специфические при отсутствии К+ и маркером длин
- 58. Ошибки постаналитического этапа Ошибки интерпретации результатов ПЦР Сравнение результатов ПЦР и ИФА Сравнение ПЦР и микроскопии
- 59. Ошибки интерпретаци результатов ПЦР Неверная интерпретация результатов ПЦР-анализа, вследствие ошибочных представлений об инфекционном агенте или о
- 60. Сравнение результатов ПЦР и ИФА Наличие серологического окна Развитие иммунологической толерантности Генетически обусловленная серонегативность Выявление «иммунологического
- 61. Сравнение результатов ПЦР и микроскопии Низкая чувствительность микроскопии Субъективность оценки результатов Ограниченный спектр выявляемых патогенов
- 63. Скачать презентацию