Методы изучения регуляторных районов генов

Содержание

Слайд 2

(N12) 70 mer олигонуклиотид 70 вторая синтезированная цепь Мечение двойной цепи

(N12)

70 mer олигонуклиотид

70 вторая синтезированная цепь

Мечение двойной цепи

Набор меченых 70bp

олигонуклеотидов пропускается
через аффиную колонку, содержащую
Hoxd1 белок

Эллюция связанных олигонуклиотидов

Выделение эллюированных олигонуклиотидов

ПЦР-амплификация с выделенных олигонуклиотидов

Клонирование и секвенирование отобранных олигонуклиотидов

3 цикла

праймер C

праймер D

Слайд 3

Слайд 4

Слайд 5

Слайд 6

Слайд 7

Слайд 8

A МТдт 5'-AGCACTATAGGGACATGATGTTCCACACGTCACATGGTCGTCC-3' МТ27 5'-GATGTCGCGGGAACACAGTGTTCCGTGTACTGTGCAACTACTT-3' 25 5'-GATCCCCCCGGGCATCACCGTGCAGGGGGGGAGGTACAGAGTGTTCT GCGAGGATGCG-3' G/C богатое окружение

A
МТдт 5'-AGCACTATAGGGACATGATGTTCCACACGTCACATGGTCGTCC-3'
МТ27 5'-GATGTCGCGGGAACACAGTGTTCCGTGTACTGTGCAACTACTT-3'
25 5'-GATCCCCCCGGGCATCACCGTGCAGGGGGGGAGGTACAGAGTGTTCT
GCGAGGATGCG-3' G/C богатое окружение (28% А/Т п.н.)


111 5'-GATCCTGTTACCATAGTGTAACTTCCTATTCAGGTACAATATGTTCT
ATACTTCTATTT-3' А/Т богатое окружение (72% А/Т п.н.)

Рис. 2. Влияние первичной структуры ДНК в окружении консенсуса сайтов связывания рецептора глюкокортикоидов на эффективность связывания ДНК с рецептором.
К - ДНК-проба в комплексе с рецептором глюкокортикоидов; 0 - свободная ДНК-проба; 3-5 и 8-11 - вытеснение меченой пробы из коплекса с ГР различными фрагментами немеченой конкурентной ДНК: МТдт - EcoRI-HindIII фрагмент pMTдт, МТ27 - EcoRI-HindIII фрагмент pMT27, 25 - EcoRI-HindIII фрагмент p25, 111 - EcoRI-HindIII фрагмент p111, Н - PvuII-EcoRI фрагмент рUC19 (неспецифическая ДНК).

Слайд 9

Принцип метода иммунопреципитации in vivo

Принцип метода иммунопреципитации in vivo

Слайд 10

Иммунопреципитация хроматина in vivo с использованием антител против SF-1 для трёх

Иммунопреципитация хроматина in vivo с использованием
антител против SF-1 для трёх генов

мыши

Семенники мышей линии C57Br возраста 7-10 дней

Слайд 11

Scheme of chromatin immunoprecipitation workflow ChIP-chip ChIP-seq microarray analysis Massive parallel sequencing 1 2 3

Scheme of chromatin immunoprecipitation workflow

ChIP-chip

ChIP-seq

microarray analysis

Massive parallel sequencing

1

2

3

Слайд 12

Features of p65-binding sites on chromosome 22 R. Martone, G. Euskirchen,

Features of p65-binding sites on chromosome 22

R. Martone, G. Euskirchen, P.

Bertone, S. Hartman et al. Distribution of NF-B-binding sites across human chromosome 22
PNAS, October 14, 2003, vol. 100 no. 21, 12247–12252

(A) p65 binding relative to Sanger-annotated genes and hybridizing regions on chromosome 22 is illustrated.
(B) Distribution of NF-B consensus sequences in p65-binding sites.
The sequences of p65-bound fragments on the microarray were searched for NF-B consensus sites by using both an in-house chromosome annotation system
and the TFSEARCH database.

www.cbrc.jpresearchdbTFSEARCH.html

Слайд 13

Location and Position of GREs

Location and Position of GREs

Слайд 14

Weak points of TFBS identification by ChIP-seq technology Insufficient resolution Typical

Weak points of TFBS identification by ChIP-seq technology

Insufficient resolution
Typical ChIP-seq peak

– 100-500 bp
Typical TF footprint on DNA – 5-25 bp

TFBS clusters
A group of neighboring TFBSs is usually processed by peak-callers as one peak

Indirect TF binding to DNA
The cases of direct and indirect interaction of TF with DNA are indistinguishable

1

2

3

False positive peaks (antibody cross-specifity, overrepresented seqs)

4

5

The spectrum of detected binding loci depends on cell type and state

Слайд 15

Методы предсказания ССТФ De novo методы поиска ССТФ Методы, основанные на

Методы предсказания ССТФ

De novo методы поиска ССТФ

Методы, основанные на использовании обучающих

выборок ССТФ

методы поиска наиболее представленных мотивов в участках связывания ТФ с хроматином (пиках СhIP-seq). (без предварительной информации о ССТФ)

Консенсус, весовые матрицы (PWM) и пр.

Используемые для интерпретации данных СhIP-seq
биоинформационные методы

monoCHiPMunk

FoxA oPWM
SiteGA

[Levitsky V.G., et al., BMC Bioinformatics 2007, 8:481]
[Levitsky V.G., et al., Dokl Biochem Biophys. 2011, 436:12-5]

Kulakovskiy I.V., et al.,
Bioinformatics 2010, 26(20):2622-3

diCHiPMunk

Слайд 16

FoxA2 ChIP-seq в печени мыши [Wederell et al., 2008] Число пиков–

FoxA2 ChIP-seq в печени мыши [Wederell et al., 2008]

Число пиков– 11

475
Средняя высота пика– 16
Средняя длина пика– 727 bp

Консенсус FoxA :
5'-RYMAAYA-3'
[Overdier et al., 1994; Roux et al., 1995]

ТФ FoxA : FoxA1, FoxA2, FoxA3

FoxAs имеют высококонсервативный ДСД типа winged-helix (FKH).
FoxA обладают способностью вытеснять линкерные гистоны и открывать компактизованный хроматин, т.е. могут служить как pioneer transcription factors.
FoxAs играют важную роль в раннем эмбриогенезе, органогенезе и поддержании метаболического гомеостаза организма.
Все три ТФ FoxA остаются активными в печени взрослого, играя активную роль в регуляции метаболизма

Wederell E.D. et al. Nucleic Acids Res. 2008 36: 4549–4564

Объект исследования: cайты связывания транскрипционных факторов FoxA

Слайд 17

Для создания обучающей выборки из 81 известных ССТФ FoxA использовали данные

Для создания обучающей выборки из 81 известных ССТФ FoxA использовали данные

из базы TRRD и литературных источников.
Критерием для отбора сайтов служило наличие доказательств взаимодействия FoxA с соответствующим районом ДНК, полученных одним из следующих методов:
футпринтинг ДНКазой I с использованием очищенного белка;
EMSA с использованием очищенного белка;
EMSA с использованием ядерного экстракта белков и специфических антител (EMSA supershift).
Выравнивание последовательностей проводилось относительно наиболее представленного мотива (в кодировке IUPAC) [Levitsky et al., 2011]. В итоге, для построения методов PWM и SiteGA использовалось выравнивание 53 последовательностей, содержащих мотив TRTTTRYH (R=A/G, Y=C/T, H=A/C/G).

PWM и SiteGA

Слайд 18

Для обучения CHiPMunk были использованы 4455 локуса связывания FoxA2 (CHiP-seq; высота

Для обучения CHiPMunk были использованы 4455 локуса связывания FoxA2 (CHiP-seq; высота

пика >15). Длины мотива для mono- & di- версий Chipmunk установлены как 20 нт и 28 нт, соответвенно. Выявленные мотивы имеют высокий уровень сходства как с мотивом TRTTTRYH, полученным на выборке 81 СС FoxA, так и с известным консенсусом сайтов FoxA2 [Overdier et al., 1994; Roux et al., 1995].

Лого наиболее представленных мотивов, полученных с помощью mono- and diChipmunk для CHiP-seq FoxA2

monoCHiPMunk

diCHiPMunk

CHiPMunk

Слайд 19

Слайд 20

Экспериментальная верификация 64 предсказанных ССТФ FoxA методом задержки в геле (EMSA),

Экспериментальная верификация 64 предсказанных ССТФ FoxA методом задержки в геле (EMSA),

конкурентный анализ

GST-DBD-FoxA2:

[32P]-TTR:

немеченый конкурент:

Задержка в геле GST-слитым белком, соответствующим ДНК-связывающему домену ТФ FoxA2

×2, ×5 или ×20 молярный избыток конкурентного олигонуклеотида

меченый олигонуклеотид, соответствующий сайту связывания FoxA из промотора гена ttr мыши

(скор CHiPMunk | скор SiteGA)
cкор EMSA

Слайд 21

скор EMSA подтвержденные сайты Скор EMSA расчитывался как отношение угла наклона

скор EMSA

подтвержденные сайты

Скор EMSA расчитывался как отношение угла наклона линейной регрессии

log-кривой зависимости от концентрации тестируемого олигонуклеотида к положительному контролю (TTR) и использовался в качестве оценки относительной аффинности этого олигонуклеотида. Поскольку скор EMSA распределен достаточно равномерно, порог отсечения неподтвержденных сайтов был выбран вручную (0.25).

Экспериментальная верификация 64 предсказанных ССТФ FoxA методом задержки в геле (EMSA), конкурентный анализ

Слайд 22

Слайд 23

Слайд 24

Figure 7. Context patterns of the SF-1 BSs recognized by sequence

Figure 7. Context patterns of the SF-1 BSs recognized by sequence

analysis of the top-scoring ChIP-seq peaks (peak height of 15 or higher). The frequency matrices were visualized by the WebLogo tool (Crooks et al., 2004) for the samples of sites predicted by oPWM, Sitecon, and SiteGA. The X axis shows nucleotide positions and Y axis, bits.
Слайд 25

Слайд 26

Слайд 27

СУПЕРЭНХАНСЕРЫ

СУПЕРЭНХАНСЕРЫ

Слайд 28

СУПЕРЭНХАНСЕРЫ

СУПЕРЭНХАНСЕРЫ

Слайд 29

СУПЕРЭНХАНСЕРЫ

СУПЕРЭНХАНСЕРЫ