Фотообращаемые эффекты фитохромов

Июль 31, 2022

Главная
Биология
Фотообращаемые эффекты фитохромов

Содержание

2. Системы фоторецепторов тесно взаимодействуют
3. Принцип работы фитохрома
4. Фотообращаемые эффекты фитохромов. Покрытосеменные салат-латук семена Стимуляция прорастания овес этиолированные Стимуляция деэтиоляции проростки горчица проростки Стимуляция
5. Эффекты фитохромов можно разделить по их зависимости от интенсивности света VLFR (very low fluence responses) 0,1
6. Фотоконверсия фитохрома – цис-транс изомерия под действием света. Форма 660 (неактивная) Форма 730 (активная) Фитохром А:
7. Фитохром и спектры его поглощения NB – фотостационарное состояние фитохрома
8. Структура апопротеина фитохрома N-концевой фотосенсорный домен (CBD-chromophore binding domain) и С-концевой регуляторный домен соединены гибким участком
9. Фитохромов несколько, их активность регулируется фосфорилированием Вслед за активированием красным светом, активность фитохромов регулируется в зависимости
10. Фитохромы – основная система фоторецепторов клетки Свойства фитохромов модифицируются светом. А. Спектр поглощения phyA овса в
11. Откуда взялся фитохром? А. Консервативные участки фитохромов цианобактерий (Cph1) и Arabidopsis. Консервативный остаток цистеина для связывания
12. Фитохромы высших растений – серин-треониновая киназа, цианобактерий – гистидинкиназа…
13. Спектры поглощения фитохромов А и В Соотношение красного и дальнего красного света в разных условиях R/Fr
14. Фитохромы А и В часто «играют» как антогонистиы… Разница в работе фитохромов А и В объясняется
15. Фитохром А регулирует около 10% генов арабидопсиса Всего исследовали активность 8 200 генов – около трети
16. Сигналинг фитохромов. Общие положения Два типа ответов – быстрые (секунды) и «глобалные». Быстрые ответы связаны с
17. В сигналинге фитохромов важную роль играет убиквитирование трансфакторов и их развал в протеасоме. COP1 – это
18. Схема сигналинга фитохрома В
19. Схема возможных путей трансдукции сигнала от фитохромов Фитохромы А или В в ядре могут регулировать активность
20. То же, но в картинках…
21. Рецепторы синего света отвечают за многое… Реакция фототропизма Движение хлоропластов Циркадные ритмы: открытие устьиц «сонные» движения
22. Структура фототропина и криптохрома. Фототропины: мембранносвязанные Ser-Thr- киназы. 120 kDa. В плазмалемме. Криптохромы: Cry1 – 190
23. Фототропины участвуют в регуляции разных фотодвижений Изгибание колеоптиля Движение хлоропластов Открывание устьиц У Arabidopsis работают два
24. Фтототропин-Phy3 – «гибридный» фоторецетор Adiantum.
25. Схема строения фоторецепторов и их взаимодйствие
26. Роль «биологических часов» в жизни растения а. Экспрессия некоторых генов подчинена циркадным ритмам. Гены, кодирующие хлорофилл-а/в-связывающие
27. Компоненты системы «биологических часов»
28. Молекулярная модель эукариотического циркадного осциллятора a. Общая схема, показывающая главную петлю обратной связи - основу для
29. Упрощенная модель циркадного осциллятора Arabidopsis . Модель основана на обратной связи между LHY, CCA1 и TOC1.
30. Модель циркадной системы Arabidopsis Входной сигнал - Сry1 и Сry2 – криптохромы, PhyA, PhyB - фитохромы
31. То же , но в другом виде и с некоторыми вариациями… Вход светового сигнала осуществляется через
32. Стратегии развития животных и растений различны. У животных: развитие – серия сложных преобразований, которые ведут к
33. Эмбриогенез у арабидопсиса Установление оси «корень – побег». Зигота делится ассиметрично, образуются суспензор и зародышевая клетка.
34. Особенности и механизмы эмбрионального развития растений Формирование зародыша у растений происходит за счет изменения скорости и
35. Главную роль в регуляции эмбриогенеза играет ауксин Мутанты по эмбриогенезу у Arabidopsis GURK – отсутствуют апикальная
36. Наиболее «ранние» регуляторы эмбриогенеза: гены, контролирующие полярный транспорт ауксинов полярность развития зародыша со стадии 2х клеток
37. Гены-регуляторы упорядоченного деления клеток в эмбриогенезе gnom knolle keule hinkel tsd1,2 эндо-1,4-β-D-глюканаза синтаксин кинезин белок SNARE
38. GNOM (GN) – регулятор локализации PIN белков PIN Направление ПАТ Направление растяжения клеток Направление деления клеток
39. Гены- регуляторы развития центрального домена зародыша WT fk (fackel), hyd (hydra), cephalopod (cph) редукция гипокотиля +
40. Соматический эмбриогенез – модель для изучения механизмов эмбриогенеза in vivo
42. Скачать презентацию

Слайд 2

Системы фоторецепторов тесно взаимодействуют

Слайд 3

Принцип работы фитохрома

Слайд 4

Фотообращаемые эффекты фитохромов.
Покрытосеменные
салат-латук семена Стимуляция прорастания
овес этиолированные Стимуляция деэтиоляции
проростки
горчица

проростки Стимуляция формирования листовых примордиев,
развития молодых листьев, синтез антоцианов
горох Ингибирование удлинения междоузлий
дурнишник Задержка цветения (регуляция фотопериодизма)
Голосеменные
Сосна Стимуляция накопления хлорофилла
Pteridophytes
Onaclea Активация роста
Bryophytes
Polytrichum Стимуляция размножения пластид
Chlorophytes
Mougeotia Стимуляция ориентации хлоропластов
по отношению к свету

Слайд 5

Эффекты фитохромов можно разделить по их зависимости от интенсивности света
VLFR (very

low fluence responses)
0,1 – 100 нмоль квантов/м2,
не «фотообращаема»
LFR (low fluence responses)
1 – 1000 мкмоль/м2
HIR (high irradiance responses)
до 100 ммоль/м2

Действие фитохромов различается также по длительности лаг-периода (от минут до недель),
возможности «фотообращения»

Слайд 6

Фотоконверсия фитохрома – цис-транс изомерия под действием света.
Форма 660 (неактивная)

Форма 730 (активная)

Фитохром А: имеет две формы:
А’ (80%, необратимо деградирует после перехода в активную форму ) и A” (15%).
А’ имеет PEST- мотив (деградация). Фитохром А не имеет постоянного синтеза, отвечает за ответ на свет очень низкой интенсивности, переходит в активную форму и при действии ДКС.
Функции: прорастание на ДКС, деэтиоляция (А’) цветение при низкой интенсивности света (A”)
Фитохром В: синтезируется постоянно, время полураспада 100 часов. При низких количествах или в неактивной форме включает синтез фитохрома А. Реагирует на свет средней и высокой интенсивности.
Функции: прорастание в темноте, деэтиоляция на краснм свету, and-of-day-respons, цветение при высоких интенсивностях света.

Слайд 7

Фитохром и спектры его поглощения
NB – фотостационарное состояние фитохрома

Слайд 8

Структура апопротеина фитохрома
N-концевой фотосенсорный домен
(CBD-chromophore binding domain) и
С-концевой регуляторный домен

соединены гибким участком (H).
С-концевой домен содержит консервативные участки:
регуляторный центральный участок (Quail box)
два участка димеризации (D1 и D2),
два PAS домена (P1 and P2
гистидинкиназно-подобный домен
(HKRD).

Слайд 9

Фитохромов несколько, их активность регулируется фосфорилированием
Вслед за активированием красным светом, активность

фитохромов регулируется в зависимости от качества и интенсивности света фитохром- ассоциированной фосфатазой РАРР5 и неидентифицированной киназой.

Две группы фитохромов – светолабильные (А и С)
и светостабильные (B, D, E).
Главные – PhyА и PhyВ. Разные фитохромы отвечают за разные реакции….

Слайд 10

Фитохромы – основная система фоторецепторов клетки
Свойства фитохромов модифицируются светом.
А. Спектр поглощения

phyA овса в Pr и Pfr формах
В. Схема строения фитохромов в Pr и Pfr формах:
NTE amino-terminal extension;
CBD - chromophore binding domain;
PfB - phytochromobilin;
H - hinge region;
HKRD1 - histidine kinase-related domain 1;
HKRD2 - histidine kinase domain 2;
A,B - PAS домены
Показаны некоторые свойства фитохромов, регулируемые светом.
Важно: phyB транслоцируется в ядро в активной форме Pfr,
тогда как phyA может находиться в ядре в обоих формах - Pr и Pfr

Слайд 11

Откуда взялся фитохром?
А. Консервативные участки фитохромов цианобактерий (Cph1) и Arabidopsis.
Консервативный

остаток цистеина для связывания хромофора отмечен (*).
HKD: histidine kinase domain;
PRD: PAS related domain;
HKRD: histidine kinase related domain.
H – фосфорилируемый гистидин в гистидинкиназном домене бактериального фитохрома.
Отмечен процент совпадения последовательности аминокислот в HKD у Cph1 и PRD и HKRD у Arabidopsis
Фитохром Arabidopsis имеет дополнительный N-концевой фрагмент.
В. Предполагаемая роль киназной активности фитохрома Arabidopsis.
Свет запускает киназную активность фитохрома, которая может приводить как к автофосфорилированию фитохрома, так и к трансфосфорилированию взаимодействующих с ним белков (PIFs - phytochrom-interactiong factors) В свою очередь, эти фосфорилирования могут приводить к изменению стабильности самого фоторецептора в случае phyA, субклеточной локализации фитохромов, их способности к взаимодействию с PIFs а также к активации других сигнальных молекул.

Слайд 12

Фитохромы высших растений – серин-треониновая киназа, цианобактерий – гистидинкиназа…

Слайд 13

Спектры поглощения фитохромов А и В
Соотношение красного
и дальнего красного
света

в разных условиях
R/Fr
Дневной свет 1.19
Сумерки 0,7 – 0,9
Полог леса 0,2 – 0,7
Вода (1м) 1,2 - 17

Строго обратимую реакцию имеет фитохром В - PhyВ
Основная часть фитохрома А не имеет обратимой активации ДК и К светом.
PhyA может превращаться в активную форму Pfr под действием ДК…

Слайд 14

Фитохромы А и В часто «играют» как антогонистиы…
Разница в работе фитохромов

А и В объясняется разницей в
их «чувствительности»,
разным уровнем фотостационарного состояния,
возможностью деградации фитохрома А…

Слайд 15

Фитохром А регулирует около 10% генов арабидопсиса
Всего исследовали активность 8

200 генов –
около трети всех генов арабидопсиса

Слайд 16

Сигналинг фитохромов. Общие положения
Два типа ответов – быстрые (секунды) и «глобалные».
Быстрые

ответы связаны с потоком ионов через мембраны. Скорее всего вторичный мессенджер – Са++
Глобальные связаны с регуляцией экспрессии генов.
В цитозоле:
Киназы PKS1 (Phytochrome kinase substrate 1), усиливает VLFR РhyA,
NDPK2 (nukleoside diphosphate kinase 2). Ee ассоциация с phyA усиливает конверсию GDP в GTP.
PAPP5 – фосфатаза, дефософрилирует Ser7 и Ser298, делая PhyA активным и стабильным..
В ядре :
PIF – phytochrom-interactiong factors. PIF3 – трансфактор, который взаимодействует как с PhyA так и с PhyB.
Трансфакторы HFR1, HY5, LAF1.
Белки генов COP (constitutiv photomorphogenesis), DET (de-etiolated), FUSCA (накопление антоцианов). Они – компоненты COP/DAT/FUS комплекса деградации белков. СОР1 – кодирует Е3 лигазу убиквитинового комплекса.

Слайд 17

В сигналинге фитохромов важную роль играет убиквитирование трансфакторов и их развал

в протеасоме.

COP1 –
это спец. Е3-убиквитин лигаза

Слайд 18

Схема сигналинга фитохрома В

Слайд 19

Схема возможных путей трансдукции сигнала от фитохромов
Фитохромы А или В в

ядре могут регулировать активность генов непосредственно или взаимодействуя с ядерными белками типа SPA1, FAR1, GI и PIF3. Регулирование также может происходить за счет уровня COP1, регулирующих протеолиз трансфакторов типа HY5. В темноте COP1 с помощью COP/DET/FUS комплекса вызывает протеолиз HY5. Свет инактивирует COP1 белок и вызывает его перемещение из ядра в цитозоль, разрушая COP/DET/FUS протеасомный комплекс.
Фитохром В в ядре взаимодействует с трансфактором PIF3, связывающегося с G-боксом в промоторах светорегулируемых генов. PfrB-PIF3 комплекс активизирует/подавляет транскрипцию этих генов.
Дальний красный свет возвращает фитохром B в форму PrB, вызывая его отделение от PIF3 комплекса, что изменяет транскрипцию генов.

В цитозоле.
Красный свет (R) переводит Pr в форму Pfr и вызывает перемещение Pfr фитохрома А или В из цитозоля в ядро. Образование Pfr также сопровождается автофосфорилированием фитохрома и трансфосфорилирование PKS1 в цитозоле.
Pfr вызывает активацию G-белков и повышает уровень cGMP и Ca 2+, которые участвуют в регуляции транскрипции светорегулируемых генов.

2. В ядре.

Слайд 20

То же, но в картинках…

Слайд 21

Рецепторы синего света отвечают за многое…
Реакция фототропизма
Движение хлоропластов
Циркадные ритмы:
открытие устьиц
«сонные» движения

листьев при переходе
«ко дню»

Деэтиоляцию у проростков
Торможение роста побега растяжением
Раскрытие семядолей
Формирование листьев
Синтез хлорофилла
Синтез каротиноидов
Синтез белков ССК
Синтез Рубиско

Синтез флавоноидов и антоцианов
Система криптохрома
включена в регуляцию цветения

Слайд 22

Структура фототропина и криптохрома.
Фототропины: мембранносвязанные
Ser-Thr- киназы.
120 kDa. В плазмалемме.
Криптохромы:

Cry1 – 190 a-к,
в темноте в ядре, на свету – в цитозоле
Cry2 – 120 а-к. Постоянно в ядре.
PHR – photolyase related domain
LOV - light, oxygen, voltage domains (PAS- domains). Связывают флавин и участвуют в белок-белковых взаимодейстиях
DAS domain:
DQXVP-acidic-STAES
птерин, флавин (ФМН)

Слайд 23

Фототропины участвуют в регуляции разных фотодвижений
Изгибание колеоптиля
Движение хлоропластов
Открывание устьиц
У Arabidopsis работают

два фототропина с разной чувствительностью – Phot1 (высокочувствительный) и Phot2 – низкочувствительный.

Фототропины влияют на экспрессию ауксин-зависимых генов
Одна из мишеней фототропинов (ARF7) - транскрипционный фактор из системы ответа на ауксин. Мутанты по этому гену имеют нарушенный фототропизм, а также нарушенный гравитропический ответ и экспрессию ауксин-регулируемых генов.

Перераспределения ауксина, по-видимому, регулируется одинаково у разных тропизмов. Различия в экспрессии белков, отвечающих на ауксин.

Слайд 24

Фтототропин-Phy3 – «гибридный» фоторецетор Adiantum.

Слайд 25

Схема строения фоторецепторов и их взаимодйствие

Слайд 26

Роль «биологических часов» в жизни растения
а. Экспрессия некоторых генов подчинена циркадным

ритмам. Гены, кодирующие хлорофилл-а/в-связывающие белки светособирающего комплекса (Lhcb, САВ), нитрат-редуктаза (NIA2).
Часы координируют метаболизм для максимального уровня фотосинтеза.
b. Цитозольные концентрации свободного кальция осциллируют согласно циркадным ритмам у Arabidopsis
c. Часы регулируют фосфорилирование некоторых белков. Циркадная активность киназы, которая фосфорилирует ФЕП-карбоксилазу (Kalanchoe fedtschenkoi)
d. движения хлоропластов (Arabidopsis);
e. открывание устьиц (Arabidopsis);
f. удлинение гипокотиля (Arabidopsis):
g. Движения семядолей и листьев (Arabidopsis):
h. раскрытие цветков (Kalanchoe):
i. синхронизация процессов, связанных с развитием - например, времени цветения. Мутации в генах, связанных с часами изменили фотопериодический контроль цветения.

Слайд 27

Компоненты системы «биологических часов»

Слайд 28

Молекулярная модель эукариотического циркадного осциллятора
a. Общая схема, показывающая главную петлю обратной

связи - основу для эукариотического циркадного генератора. Пара "плюсовых" элементов (CLOCK и CYC в дрозофиле, WC1 и WC2 в Neurospora, CLOCK и BMAL в мышке) формируют гетеродимеры, которые действуют как активаторы транскрипции, взывающие экспрессию гена «часов». Белковые продукты ("минусовые" элементы) генов часов (PER и TIM в Дрозофиле, FRQ в Neurospora, mCRYs и mPERs в мышке) блокируют действие "плюсовых" элементов, подавляя их выражение.
b. Модель циркадной системы Neurospora . WC-1-WC-2 гетеродимер активирует экспрессию гена часов FRQ. FRQ белок играет две роли. В одной регуляторной петле он действует как отрицательный регулятор WC-1-WC-2 гетеродимера.
В другой петле FRQ действует как положительный регулятор синтеза белка WC 1 через WC 1 mRNA. "Плюсовые" элементы изображены синим, "минусовые" - красным. Поскольку FRQ действует и как положительный и отрицательный элемент, он изображен и красным и синим.

Слайд 29

Упрощенная модель циркадного осциллятора Arabidopsis .
Модель основана на обратной связи между

LHY, CCA1 и TOC1.
LHY и CCA1 образуют гетеродимерный транскрипционный фактор, подавляющий транскрипцию гена белка TOC1, который является стимулятором экспрессии LHY/CCA1. Свет активизирует экспрессию комплекса LHY/CCA1, он накапливается в цитоплазме и подавляет экспрессию TOC1-гена, что в свою очередь вызывает снижение уровня экспрессии LHY/CCA1. Понижение уровня LHY/CCA1 ведет к повышению уровня транскрипции TOC1 и пик концентрации его мРНК приходится на конец светлого времени суток. В результате трансляции мРНК TOC1 в цитоплазме повышается уровень белка TOC1, стимулирующего экспрессию LHY/CCA1. Пик концентрации LHY/CCA1 приходится на начало светлого времени суток, в результате чего цикл запускается снова.

Центральный осциллятор состоит из генов LHY (late elongated hypocotyl), TOC1 (timing of cab expression1) и CCA1 (circadian clock associated1), соответствующих мРНК и белков. Белок ТОС1 содержит специфичный для растений домен CCT, который вовлечен в белок - белковые взаимодействия, а так же определяет ядерную локализацию белка.

genes

Слайд 30

Модель циркадной системы Arabidopsis
Входной сигнал - Сry1 и Сry2 –

криптохромы, PhyA, PhyB - фитохромы
Белок ZTL (ZEITLUPE) взаимодействует с PhyB и Cry1 и принимает участие в трансдукции светового сигнала.
Белок ELF3 (EARLY FLOWERING 3) противодействует фототрансдукции взаимодействуя с PhyB в темное время суток и заставляет всю систему самоосциллировать.
ZTL и FKF1, работающие на "входе" сигнала, могут взаимодействовать с фосфорилированными белками осциллятора, определяя их деградацию
Белки осциллятора могут быть фосфорилированы CK2 – метка для убиквитирования.
ТОС1 активирует экспрессию LHY/CCA1 путем взаимодействия с PIF3 (PHYTOCHROME-INTERACTING FACTOR3), белком, содержащим домен helix-loop-helix и способным связываться с промоторами LHY и CCA1. Важно – это «пункт взаимодействия» с фитохромами, т.е. «настройка часов».

в овалах – гены,
в квадратиках - белки

Слайд 31

То же , но в другом виде и с некоторыми вариациями…

Вход светового сигнала осуществляется через фитохромы и криптохромы (для простоты, показаны только PHYB и CRY1). Медиаторы входа - ZTL, ELF3 и GI (PIF3. ZTL/ADO1 связаны с PHYB и CRY1). PIF3 связывается с промоторами CCA1 и LHY и возможно с другими компонентами часов. Для простоты показан единственный центральный осциллятор, ассоциированный с многими предполагаемыми его компонентами. Компоненты на круглых стрелках осцилируют на уровне mRNA. Нельзя вывести причинные отношения среди предполагаемых компонентов на круге из-за недостаточности экспериментальных данных.
LKP2 - вероятный кандидат на участие в осцилляторе, поскольку его mRNA осциллирует.
CCA1 и LHY фосфорилируются CK2. В фосфорилированном виде они становятся субстратами для белков F-бокса (ZTL, FKF и LKP2) и последующего убиквитирования и деградации в протеосоме. Выходные сигналы могут идти от каждого из предполагаемых компонентов осциллятора.
CCA1, LHY, RVEs и TOC1/APRR1 являются ДНК-связывающими белками, CCA1 может связываться с промотором LHCB.
Другие выходные сигналы от осциллятора могут образовывать обратные связи с "входными" компоненты, типа PHYA, PHYB и CRY1, которые регулируются часами на уровне транскрипции и mRNA.

ARR - ARABIDOPSIS RESPONSE REGULATOR genes.
Многие из них - ARR5, ARR6, ARR7, ARR15
участвуют в петле отрицательной регуляции цитокининового сигналинга…

Слайд 32

Стратегии развития животных и растений различны.
У животных: развитие – серия сложных

преобразований, которые ведут к быстрому превращению недифференцированных клеток к строго дифференцированным. Развитие животных ведет к жесткому ограничению потенциала развития отдельной клетки. Когда организм сформировался, клетки и ткани окончательно дифференцированы и, как правило, не могут дедифференцироваться. Нарушение этого принципа приводит к раковым заболеваниям.
У растений: клетки истинно тотипотентны. Практически любая клетка растения может дедифференцироватся, «войти» в клеточный цикл и в конечном счете сформировать целое растение.
Меристемы работают в течение всей жизни растения и формируют новые органы (боковые корни, новые побеги и др.)
У животных репродуктивные органы закладываются на ранней эмбриональной стадии развития.
У растений – после длительного вегетативного существования, и не во всех случаях.

Слайд 33

Эмбриогенез у арабидопсиса
Установление оси «корень – побег».
Зигота делится ассиметрично, образуются

суспензор и зародышевая клетка. Деление зародышевой клетки приводит к формированию меристем (рядом с суспензором – корневая).
Формируется сосудистый камбий – связь меристем.
Из апкальной меристемы стебля формируются зародышевые листья (семядоли).
Наконец, все это «упаковывается» в семя.

Слайд 34

Особенности и механизмы эмбрионального развития растений
Формирование зародыша у растений происходит

за счет изменения скорости и направления делений клеток.
Перемещения клеток не происходит.
Основные факторы:
- скорость деления клеток
- асимметричность деления
- полярность клеток
Дифференцировка тканей происходит раньше и независимо от морфогенеза. До начала дифференцировки судьба клетки не определена.
Экспрессия «эмбриональных» генов пространственно специфична. Клетки, формирующие определенные зоны зародыша автономны – мутации, затрагивающие одну часть зародыша, как правило, не проявляются в другой его части.

Мутанты по эмбриогенезу

Слайд 35

Главную роль в регуляции эмбриогенеза играет ауксин
Мутанты по эмбриогенезу у Arabidopsis
GURK

– отсутствуют апикальная меристема и семядоли. Кодирует ацетил-СоА карбоксилазу
FAKEL – отсутствует гтпокотиль. Кодирует стерин С14 редуктазу
MONOPTEROS (MP) – отсутствуют гипокотиль и корни. Кодирует трансфактор ауктсинового ответа ARF
GNOM (GN) – редуцированы апикальные побеговая и корневая меристемы. Кодирует GEF – фактор обмена гуаниновых нуклеотидов. GEF важен для распределения транспортеров ауксина PIN.

Транскрипция разных генов в процессе эмбриогенеза

Потоки ауксина в ходе эмбриогенеза, регулируемые распределением PIN

Слайд 36

Наиболее «ранние» регуляторы эмбриогенеза:
гены, контролирующие полярный транспорт ауксинов
полярность развития зародыша

со стадии 2х клеток определяется направлением полярного транспорта ауксина (за счет белка PIN7)
на стадии глобулы происходит обособление базального домена за счет изменения локализации белков PIN7 и PIN1

Слайд 37

Гены-регуляторы упорядоченного деления клеток в эмбриогенезе
gnom knolle keule hinkel tsd1,2
эндо-1,4-β-D-глюканаза
синтаксин
кинезин
белок

SNARE комплекса

активатор
ГТФаз

везикулярный транспорт

локализация PIN белков

формирование мембран

формирование клеточной стенки

цитокинез

градиент ауксинов

пектин-метил-трансфераза

Синтаксин - трансмембранный белок, компонент молекулярной машины экзоцитозного белкового комплекса (SNARE-комплекса). Содержит SNARE домен - последовательность из 60-70-аминокислот.
Кинезины - суперсемейство моторных белков, движутся по микротрубочкам, участвуют в везикулярном транспорте

Слайд 38

GNOM (GN) – регулятор локализации PIN белков
PIN
Направление ПАТ
Направление растяжения клеток

Направление деления клеток

Полярный транспорт ауксинов (ПАТ)

Направленный везикулярный транспорт PIN белков

GTPase

GTP

GDP

GTP

GNOM/GEF (Guanosine Excahnge Factor) – необходим для движения везикул

Слайд 39

Гены- регуляторы развития центрального домена зародыша
WT
fk (fackel),
hyd (hydra), cephalopod (cph)
редукция

гипокотиля + нарушение биосинтеза стеринов

С14-стерин
редуктаза

С7,8-стерин
изомераза

Стерин-метил-трансфераза

HYD

CPH

формирование клеточной стенки

ориентация PIN белков

формирование мембран

растяжение клеток, цитокинез

стерины

синтез брассиностероидов

Слайд 40

Фотообращаемые эффекты фитохромов

Содержание

Системы фоторецепторов тесно взаимодействуют

Принцип работы фитохрома

Фотообращаемые эффекты фитохромов.Покрытосеменные салат-латук семена Стимуляция прорастанияовес этиолированные Стимуляция деэтиоляции проросткигорчица

Эффекты фитохромов можно разделить по их зависимости от интенсивности светаVLFR (very

Фотоконверсия фитохрома – цис-транс изомерия под действием света. Форма 660 (неактивная)

Фитохром и спектры его поглощенияNB – фотостационарное состояние фитохрома

Структура апопротеина фитохромаN-концевой фотосенсорный домен (CBD-chromophore binding domain) иС-концевой регуляторный домен

Фитохромов несколько, их активность регулируется фосфорилированиемВслед за активированием красным светом, активность

Фитохромы – основная система фоторецепторов клеткиСвойства фитохромов модифицируются светом.А. Спектр поглощения

Откуда взялся фитохром?А. Консервативные участки фитохромов цианобактерий (Cph1) и Arabidopsis. Консервативный

Фитохромы высших растений – серин-треониновая киназа, цианобактерий – гистидинкиназа…

Спектры поглощения фитохромов А и ВСоотношение красного и дальнего красного света

Фитохромы А и В часто «играют» как антогонистиы…Разница в работе фитохромов

Фитохром А регулирует около 10% генов арабидопсиса Всего исследовали активность 8

Сигналинг фитохромов. Общие положенияДва типа ответов – быстрые (секунды) и «глобалные».Быстрые

В сигналинге фитохромов важную роль играет убиквитирование трансфакторов и их развал

Схема сигналинга фитохрома В

Схема возможных путей трансдукции сигнала от фитохромовФитохромы А или В в

То же, но в картинках…

Рецепторы синего света отвечают за многое…Реакция фототропизмаДвижение хлоропластовЦиркадные ритмы:открытие устьиц«сонные» движения

Структура фототропина и криптохрома.Фототропины: мембранносвязанные Ser-Thr- киназы. 120 kDa. В плазмалемме.Криптохромы:

Фототропины участвуют в регуляции разных фотодвиженийИзгибание колеоптиляДвижение хлоропластовОткрывание устьицУ Arabidopsis работают

Фтототропин-Phy3 – «гибридный» фоторецетор Adiantum.

Схема строения фоторецепторов и их взаимодйствие

Роль «биологических часов» в жизни растенияа. Экспрессия некоторых генов подчинена циркадным

Компоненты системы «биологических часов»

Молекулярная модель эукариотического циркадного осциллятораa. Общая схема, показывающая главную петлю обратной

Упрощенная модель циркадного осциллятора Arabidopsis .Модель основана на обратной связи между

Модель циркадной системы Arabidopsis Входной сигнал - Сry1 и Сry2 –