Антагонист ГК рецепторов

Содержание

Слайд 2

Важной ролью эндогенных ГК является подавление иммунной реакции, чтобы предотвратить ее

Важной ролью эндогенных ГК является подавление иммунной
реакции, чтобы предотвратить ее

от достижения уровня, который
может вызвать повреждение. Эта гипотеза подтверждается
работами, в которых обнаружено, что АЭ приводит к смерти
животных в течение 24-48 часов после иммунизации крыс
лошадиной сывороткой, но после заместительной ГК терапии их
можно спасти. Антагонист RU 486 индуцирует воспаление к
ряду факторов , как и АЭ.
Слайд 3

Крысы Lewis, которые генетически детерминированы на гипореактивность ГГН системы, предрасположены к

Крысы Lewis, которые генетически детерминированы на гипореактивность ГГН системы, предрасположены

к хроническим воспалительным процессам.
Кроме того, имеются работы, которые демонстрируют
существование негативного механизма обратной связи между иммунной системой и ГГН осью.
.
Слайд 4

Провоспалительные медиаторы, в частности ИЛ-1 и ФНОα, повышаются в начале развития


Провоспалительные медиаторы, в частности ИЛ-1 и ФНОα, повышаются в начале

развития иммунной реакции, они стимулируют ГГНось, которая приводит к повышению секреции кортикостерона, подавляющего иммунный ответ. Антагонист ГК рецепторов RU-486 повышал смертность таких животных, поскольку ГК не имели возможности остановить выработку прововоспалительных цитокинов активированными АГ лимфоцитами и привлеченными ими макрофагами. Таким образом, ГК предотвращают организм от потенциально возможного повреждения.
Апоптоз, который вызывают ГК, т.е. элиминация из организма активированных антигеном клонов лимфоцитов, останавливает деструктивные для организма компоненты иммунной реакции.
Слайд 5

. У мышей с генетически детерминированным нарушением иммунной системы - мыши


. У мышей с генетически детерминированным нарушением иммунной системы -

мыши линии MRL/lpr, гомозиготные по гену лимфопролиферации lpr, МП оказывает иммунопротективный эффект. У таких мышей спонтанно развиваются аутоиммунные расстройства, протекающие по типу системной красной волчанки, нарушена продукция ИЛ-2, снижен клеточный и гуморальный (на ЭБ) иммунитет, отсутствует 2-ый ответ (число АОК после повторной иммунизации находится на уровне фона). После введение МП на пике ответа (4 день) иммунная реакция увеличивается до нормы в контроле, например, мышей гибридов (СВА х С57BL/6J). Системное введение МП 3 раза в месяц увеличивала продолжительность жизни таких мышей в 2 раза (обычно гибнут на 6-7 месяце).
Слайд 6

Обнаружена дефектность мышей MLR/lpr по продукции и/или по функциональной активности МП.

Обнаружена дефектность мышей MLR/lpr по продукции и/или по функциональной активности МП.


Показан протективный эффект МП на иммунологическую активность при стрессе.
При стрессе снижается естественная продукция МП, что говорит о возможной зависимости его выработки от нейроэндокринной системы
Слайд 7

Г.В.Идова Лаборатория механизмов нейрохимической регуляции ГУ НИИ физиологии СО РАМН г.Новосибирск

Г.В.Идова

Лаборатория механизмов нейрохимической регуляции
ГУ НИИ физиологии СО РАМН
г.Новосибирск

Работа выполнена

при поддержке РФФИ (гранты № 99-04-50017 и № 04-04-48069)

Психонейроиммуномодуляция: интегративный анализ взаимоотношения серотонинергической системы мозга и иммунологической реактивности.

Слайд 8

Olivier B. SEROTONIN: A NEVER-ENDING STORY Eur.J Pharmacol. -2015.-Vol. 753.-P. 2-18

Olivier B.

SEROTONIN: A NEVER-ENDING STORY
Eur.J Pharmacol. -2015.-Vol. 753.-P. 2-18

Слайд 9

ЭФФЕКТ АКТИВАЦИИ ИММУННОЙ СИСТЕМЫ НА СОДЕРЖАНИЕ КОРТИКОСТЕРОНА И СЕРОТОНИНА В МОЗГЕ

ЭФФЕКТ АКТИВАЦИИ ИММУННОЙ СИСТЕМЫ НА СОДЕРЖАНИЕ КОРТИКОСТЕРОНА И СЕРОТОНИНА В МОЗГЕ

Таблица

составлена по данным: Л.В. Девойно, Р.Ю. Ильюченок, 1993; Linthorst A.C.E, 1995; Zalсman А. et al., 1994, 1998; Pauli S et al., 1998; Muhankumar S.M., 1998; Wang J., Dunn A.J., A.J.; Hayley et al., 2001; Zubareva et al., 2001; A.J. Dunn A.J., 2006).
Слайд 10

Слайд 11

Угнетение иммунного ответа при активации 5-НТ сисемы: 1. Введение серотнина в

Угнетение иммунного ответа при активации 5-НТ сисемы:

1. Введение серотнина в

дозах 50-100 мг/кг;
2.Введение предшественника 5-НТР 100-200;
3. Блокада МАО-А ипразидом;
4. Блокада обратного захвата 5-НТ (сертралин обратный захват уменьшается до 80%);
5.Активация постсинаптических 5-НТ1А- рецепторов 8-OH-DPAT, 1.0 ;
6. Активация постсинаптических 5-НТ2А- рецепторов DOI, 1.0
Слайд 12

Стимуляция иммунного ответа при снижении 5-НТ системы: 1. Электролитическое разрушение ядер

Стимуляция иммунного ответа при снижении 5-НТ системы:

1. Электролитическое разрушение ядер шва

среднего мозга;
2.Блокада фермента синтеза 5-НТ трипофагидроксилазы ПХФА 500 мг/кг;
3.Блокада пресинаптических 5-НТ1А- рецепторов 8-OH-DPAT, 0.1 и делизидом, 0.1 ;
4.Блокада постсинаптических 5-НТ1А- рецепторов
WAY-100635, 1.0;
5.Блокада постсинаптических 5-НТ2А- рецепторов ципрогептадином, 20.0 и кетансерином 1.0
Слайд 13

. L- триптофан Триптофангидроксилаза ( блокатор ПХФА) 5-окситриптофан (5-ОТФ) Декарбоксилаза 5-оксиртиптамин

.
L- триптофан
Триптофангидроксилаза ( блокатор ПХФА)
5-окситриптофан (5-ОТФ)
Декарбоксилаза
5-оксиртиптамин (5-ОТ, 5-НТ – серотонин)
ПХФА (300-500

мг/кг) через 2 суток после применения повышает уровень серотонина в мозге на 92%.
ПХФА увеличивает иммунный ответ в 2 раза при введении за 2 дня до антигена ЭБ, но не изменяет иммунный ответ
при введении за сутки до иммунизации
Слайд 14

Слайд 15

Число АОК у мышей линии С57BL/6J, получавших 8-ОН-ДПАТ(2). Контроль (1) Первичный

Число АОК у мышей линии С57BL/6J, получавших 8-ОН-ДПАТ(2). Контроль (1)

Первичный и

вторичный иммунный ответ у мышей BALB/с, иммунизированных БСА (5 мг/кг), при введении 5-НТР (2). Контроль (1).

1 2

Пути реализации изменения иммунного ответа при активации 5-НТергической системы
(5-НТ, 5-НТР, sertraline, 8-ОН-ДПАТ, iprazid, DOI)

*

Нарастание СD8+ Т-лимфоцитов в костном мозге, вызванное введением сертралином (2). Контроль (1).

1 2

*

1 2

Слайд 16

5-НТ включен в регуляцию ГГН оси и контролирует активность КРФ нейронов

5-НТ включен в регуляцию ГГН оси и контролирует активность КРФ нейронов

в гипоталамусе и кортикотрофов, снтезирущих АКТГ, в гипофизе. 5-НТ1А и 5-НТ2А рецепторы обнаружены в паравентрикулярном ядре и различные их агонисты (8-OH-DPAT и DOI) вызывают повышение КРФ, АКТГ и кортикостероидов у человека и животных. Существуют многочисленные терминали, которые идут из ядер шва в гипоталамус и обнаружено синаптическое взаимодействие между 5-НТ терминалями и КРФ-содержащими нейронами паравентрикулярного ядра гипоталамуса
Слайд 17

Схематическое изображение серотонинергического нейрона с обозначением возможной локализации подтипов серотониновых рецепторов

Схематическое изображение серотонинергического нейрона с обозначением возможной локализации подтипов серотониновых рецепторов


Слайд 18

Особенности иммунной реакции при активации 5-НТ1А- и 5-НТ2А-рецепторов РОК на 103

Особенности иммунной реакции при активации 5-НТ1А- и 5-НТ2А-рецепторов

РОК на 103 клеток

1

2

3

4

5

6

1-

контроль;
2- DOI 1,0 мг/кг ;
3 – 8-ОН-ДПАТ 0,1 мг/кг ;
4 - 8-ОН-ДПАТ 1,0 мг/кг ;
5 - DOI + 8-ОН-ДПАТ 0,1 мг/кг ;
6 - DOI + 8-ОН-ДПАТ 1,0 мг/кг

* - р<0,05, ** - р<0,001, по сравнению с группой 1 (контроль)
# - p < 0,001 по сравнению с группой 2
+ - р < 0,001 по сравнению с группой 3
0 – р < 0,001 по сравнению с группой 4

*

*

*

*#

+ *

0

0 +

Слайд 19

Влияние активации и блокады пре- и постсинаптических 5-HT1A рецепторов на иммунный

Влияние активации и блокады пре- и постсинаптических 5-HT1A рецепторов на иммунный

ответ

8-OH-DPAT 1,0 мг/кг

WAY-100635 1,0 мг/кг

WAY-100635 1,0 мг/кг + 8-OH-DPAT 1,0 мг/кг

8-OH-DPAT 0,1 мг/кг

WAY-100635 0,1 мг/кг

WAY-100635 0,1 мг/кг + 8-OH-DPAT 0,1 мг/кг

*p<0,01, **P<0,001 по сравнению с контролем

АОК на 106 клеток

Слайд 20

Иммунный ответ при экспериментальном моделировании различных типов поведения, связь с активностью 5-НТергической системы

Иммунный ответ при экспериментальном моделировании различных типов поведения, связь с активностью

5-НТергической системы
Слайд 21

Изменение иммунного ответа у мышей различных линий при психоэмоциональном напряжении (социальные

Изменение иммунного ответа у мышей различных линий при психоэмоциональном напряжении (социальные

конфронтации)

АОК на 106 клеток

К

А

С

К

А

С

К

А

С

СВА

С57BL/6J

10 дней

20 дней

К – контроль; А- агрессивные животные; С – субмиссивные

*

*

* *

* *

* - р < 0,05; * * - р < 0,01 по сравнению с контролем;

10 дней

Слайд 22

Изменение числа CD4+ и CD8+Т-клеток в костном мозге у агрессивных и

Изменение числа CD4+ и CD8+Т-клеток в костном мозге у агрессивных и

субмиссивных неиммунизированных мышей линии C57BL/6J после 10-ти и 20-ти дневного тестирования конфронтаций

* - Р<0,01 * * Р<0,001 по сравнению с контролем ;
о - Р<0,01 по сравнению с агрессивными животными 10-ти дневного теста
# - Р< 0,05 по сравнению с субмиссивными животными 10-ти дневного теста

Агрессивные мыши

Субмиссивные мыши

Слайд 23

5-HIAA/5-HT

5-HIAA/5-HT

Слайд 24

Отношение 5-ОИУК/ДОФУК у субмиссивных мышей С57BL/6J

Отношение 5-ОИУК/ДОФУК у субмиссивных мышей С57BL/6J

Слайд 25

Изменение иммунного ответа у мышей различных линий при психоэмоциональном напряжении (формирование

Изменение иммунного ответа у мышей различных линий при психоэмоциональном напряжении (формирование

субмиссивного типа поведения)

СВА

С57BL/6J

АОК на 106 клеток

К

С

С+ПХФА

К

С

С+ПХФА

К – контроль; С – субмиссивные; С+ПХФА – субмиссивные + ПХФА 500 мг/кг

* - р < 0,05; ** - р < 0,01 по сравнению с соответствующим контролем;
# - р < 0,001 по сравнению с субмиссивными мышами

*

**

**

#

#

Слайд 26

Влияние блокады постсинаптических 5-НТ1А и 5-НТ2А рецепторов на число АОК у

Влияние блокады постсинаптических 5-НТ1А и 5-НТ2А рецепторов на число АОК у

мышей с субмиссивным типом поведения

Кетансерин
1,0 мг/кг

#

WAY-100635
1,0 мг/кг

5-НТ2А рецепторы

5-НТ1А рецепторы

Без препарата

Без препарата

#-р < 0,001 по сравнению с субмиссивными мышами без введения препарата

#

АОК на 106 клеток

АОК на 106 клеток

Слайд 27

Отношение 5-ОИУК/ДОФУК у агрессивных мышей С57BL/6J

Отношение 5-ОИУК/ДОФУК у агрессивных мышей С57BL/6J

Слайд 28

Влияние активации и блокады постсинаптических 5-НТ1А и 5-НТ2А рецепторов на число

Влияние активации и блокады постсинаптических 5-НТ1А и 5-НТ2А рецепторов на число

АОК у мышей с оппозитными формами поведения
Слайд 29

Изменение иммунного ответа у мышей различных линий при психоэмоциональном напряжении (иммобилизационный

Изменение иммунного ответа у мышей различных линий при психоэмоциональном напряжении (иммобилизационный

стресс)

С57BL/6J

СВА

2-2,5 месяца

2-2,5 года

К

К

К

стресс

стресс

стресс

*

*

*

СВА

С57BL/6J

К

К

стресс

стресс

стресс+ПХФА

стресс+ПХФА

*

*

#

#

* - р < 0,001 по сравнению с контролем;
# - р < 0,001 по сравнению со стрессированными животными

АОК на 106 клеток

Слайд 30

Костный мозг – центральный орган иммунитета, источник стволовых клеток -всех элементов

Костный мозг – центральный орган иммунитета, источник стволовых клеток -всех элементов

иммунной системы – лимфоцитарного и моноцитарно-макрофагального ряда, основное место дифференцировки В лимфоцитов.
Слайд 31

Клетки костного мозга вырабатывают группу регуляторных пептидов - миелопептидов, обладающих иммунорегуляторной

Клетки костного мозга вырабатывают группу регуляторных пептидов - миелопептидов, обладающих иммунорегуляторной

(повышают антитлолообразование), дифференцировочной (влияют на стволовую клетки и ранние предшественники лимфоцитов) нейротропной активностью (влияют на болевую чувствительность, эффект налоксонзависимый)
Слайд 32

Серамиил –иммуномодулятор с противобактериальным действием на основе миелопида (МП) 3; Бивален

Серамиил –иммуномодулятор с противобактериальным действием на основе миелопида (МП) 3; Бивален

иммуномодулятор с противоопухолевым действием на основе миелопида (МП) 2;
Слайд 33

Роль взаимодействия серотонин- и дофаминергической систем в иммуномодуляции РОК, % РОК

Роль взаимодействия серотонин- и дофаминергической систем в иммуномодуляции

РОК, %

РОК на 1000

клеток

Предотвращение галоперидолом иммуностимуляции, полученной при снижении активности 5-Нтергической системы

К

К

К

К

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

К – контроль, 1–разрушение ядер шва, 2–разрушение ядер шва+галоперидол, 3–ПХФА 500 мг/кг, 4–ПХФА+галоперидол, 5-ципрагептадин 20 мг/кг, 6-ципрагептадин+галоперидол, 7-разрушение ядер А9, 8-разрушение хвостатого ядра

Предотвращение ципрагептадином иммуносупрессии, вызванной разрушением ядер А9 (9) и хвостатого ядра (10)

*

*

*

*

*

Слайд 34

Предотвращение блокадой 5-НТ2А-рецепторов иммуносупрессии, вызванной антагонистом ГАМКА-рецепторов бикукуллином РОК на 1000

Предотвращение блокадой 5-НТ2А-рецепторов иммуносупрессии, вызванной антагонистом ГАМКА-рецепторов бикукуллином

РОК на 1000 клеток

К

1

2

К

– контроль
1 – бикукуллин 1 мг/кг
2 – ципрагептадин 20 мг/кг +бикукуллин

*

* - - р<0,01, по сравнению с контролем

Слайд 35

ЦИПРОГЕПТАДИН ПРЕДОТВРАЩАЕТ ИММУНОИНГИБИРУЮЩЕЕ ДЕЙСТВИЕ DSLET И РИМОРФИНА У МЫШЕЙ СВА 1

ЦИПРОГЕПТАДИН ПРЕДОТВРАЩАЕТ ИММУНОИНГИБИРУЮЩЕЕ ДЕЙСТВИЕ DSLET И РИМОРФИНА У МЫШЕЙ СВА

1 -

КОНТРОЛЬ 2 - DSLET (100 МКГ/КГ) ЗА 30 МИН ДО ИММУНИЗАЦИИ
3 - ЦИПРОГЕПТАДИН (БЛОКАТОР С2 СЕРОТОНИНОВЫХ РЕЦЕПТОРОВ) (30 МГ/КГ) ВВОДИЛИ ЗА 30 МИН ДО ИММУНИЗАЦИИ ЭБ (5 х 108)
4 - ЦИПРОГЕПТАДИН + DSLET
5 - РИМОРФИН (100 МКГ/КГ) ВВОДИЛИ ЗА 30 МИН ДО ИММУНИЗАЦИИ
6 - ЦИПРОГЕПТАДИН + РИМОРФИН
* Р <0.001 по сравнению с контролем
Слайд 36

Активация ДАергической системы у старых стрессированных мышей C57BL/6J увеличивает иммунную реакцию

Активация ДАергической системы у старых стрессированных мышей C57BL/6J увеличивает иммунную реакцию

до уровня иммунного ответа у нестрессированных молодых животных

Число АОК у крыс линии Вистар, получавших квинпирол (2). Контроль (1)

Пути реализации изменения иммунного ответа при активации ДАергической системы (L-ДОФА, мидантан, бупропион, апоморфин, квинпирол, SKF-38393)

1 2

*

1 2

*

Нарастание СD4+ Т-лимфоцитов в костном мозге, вызванное введением бупропиона (2). Контроль (1).

2,0-2,5 года

2,0-2,5 месяца

стресс+
апоморфин

тимус

контроль

апоморфин

стресс

1 2

*

Слайд 37

Изменение числа CD4+ и CD8+Т-клеток в костном мозге у агрессивных и

Изменение числа CD4+ и CD8+Т-клеток в костном мозге у агрессивных и

субмиссивных неиммунизированных мышей линии C57BL/6J после 10-ти и 20-ти дневного тестирования конфронтаций

* - Р<0,01 * * Р<0,001 по сравнению с контролем ;
о - Р<0,01 по сравнению с агрессивными животными 10-ти дневного теста
# - Р< 0,05 по сравнению с субмиссивными животными 10-ти дневного теста

Агрессивные мыши

Субмиссивные мыши

Слайд 38

Слайд 39

Слайд 40

Отношение 5-ОИУК/ДОФУК у агрессивных мышей С57BL/6J

Отношение 5-ОИУК/ДОФУК у агрессивных мышей С57BL/6J

Слайд 41

СОДЕРЖАНИЕ СЕРОТОНИНА В РАЗЛИЧНЫХ СТРУКТУРАХ МОЗГА У СУБМИССИВНЫХ МЫШЕЙ ЛИНИИ C57BL/6J

СОДЕРЖАНИЕ СЕРОТОНИНА В РАЗЛИЧНЫХ СТРУКТУРАХ МОЗГА У СУБМИССИВНЫХ МЫШЕЙ ЛИНИИ C57BL/6J

НА 10-й И 20-й ДНИ ТЕСТИРОВАНИЯ КОНФРОНТАЦИЙ

Светлые столбики - 10 дневное, темные столбики - 20 дневное тестирование конфронтаций. За 100% принято содержание серотонина в контроле (интактные животные). ФК - фронтальная кора, МК - миндалевидный комплекс, Гипп - гиппокамп, ПЯ - прилежащее ядро, Хв.ядро - хвостатое ядро, Гипот - гипоталамус, А11, А10, А9 - дофаминергические ядра. х P<0,001 по сравнению с контролем; о P<0,001 между группами мышей с 10-ти и 20-ти дневным тестированием конфронтаций

Слайд 42

СОДЕРЖАНИЕ 5-ОКСИИНДОЛУКСУСНОЙ КИСЛОТЫ (5-HIAA) (% К КОНТРОЛЮ) В РАЗЛИЧНЫХ СТРУКТУРАХ МОЗГА

СОДЕРЖАНИЕ 5-ОКСИИНДОЛУКСУСНОЙ КИСЛОТЫ (5-HIAA) (% К КОНТРОЛЮ) В РАЗЛИЧНЫХ СТРУКТУРАХ

МОЗГА У СУБМИССИВНЫХ МЫШЕЙ ЛИНИИ C57BL/6J НА 10-й И 20-й ДНИ ТЕСТИРОВАНИЯ КОНФРОНТАЦИЙ

За 100 % принято содержание 5-HIAA у контрольных (интактных) животных . Остальные обозначения те же, что и на предыдущем слайде

Слайд 43

Отношение 5-ОИУК/ДОФУК у субмиссивных мышей С57BL/6J

Отношение 5-ОИУК/ДОФУК у субмиссивных мышей С57BL/6J

Слайд 44

ИММУННЫЙ ОТВЕТ У МЫШЕЙ ЛИНИИ ASC С НАСЛЕДСТВЕННО ОБУСЛОВЛЕННЫМ ДЕПРЕССИВНО-ПОДОБНЫМ ПОВЕДЕНИЕМ

ИММУННЫЙ ОТВЕТ У МЫШЕЙ ЛИНИИ ASC С НАСЛЕДСТВЕННО ОБУСЛОВЛЕННЫМ ДЕПРЕССИВНО-ПОДОБНЫМ ПОВЕДЕНИЕМ

АОК

на 106 клеток

4 день

5 день

0

АГ

РОК на 103 клеток

АГ – антиген – эритроциты барана (5х108)
* - р<0,01 по сравнению с мышами линии СВА
# - р<0,05 по сравнению с мышами линии AKR

4 день

5 день

0

АГ

Слайд 45

Влияние хронического введения флуоксетина на иммунный ответ у мышей линий СВА

Влияние хронического введения флуоксетина на иммунный ответ у мышей линий СВА

и ASC

*

**

#

СВА

ASC

* - р < 0,01; ** - р < 0,001 по сравнению с группой ASC контроль;
# - р < 0,001 по сравнению с группой СВА контроль

1

2

3

1

2

3

1 – Контроль;
2 – Флуоксетин 10
3 – Флуоксетин 20

Слайд 46

Изменение иммунного ответа у мышей различных линий при психоэмоциональном напряжении (иммобилизационный

Изменение иммунного ответа у мышей различных линий при психоэмоциональном напряжении (иммобилизационный

стресс)

С57BL/6J

СВА

2-2,5 месяца

2-2,5 года

К

К

К

стресс

стресс

стресс

*

*

*

СВА

С57BL/6J

К

К

стресс

стресс

стресс+ПХФА

стресс+ПХФА

*

*

#

#

* - р < 0,001 по сравнению с контролем;
# - р < 0,001 по сравнению со стрессированными животными

АОК на 106 клеток

Слайд 47

Влияние иммобилизационного стресса на иммунный ответ мышей со сформированными оппозитными типами

Влияние иммобилизационного стресса на иммунный ответ мышей со сформированными оппозитными типами

поведения

*+#

Контроль

Агрессивные

Субмиссивные

Контроль

Агрессивные

Субмиссивные

РОК на 1000 клеток

РОК на 1000 клеток

*

*

СВА

С57BL/6J

*+#

**

0#

# 0

штриховка - стрессированные мыши
* - р<0,05; ** - р<0,001 по сравнению с контрольными мышами без стрессирующего воздействия;
+ - р<0,001 по сравнению с агрессивными мышами без стрессирующего воздействия;
0 - р<0,001 по сравнению с субмиссивными мышами без стрессирующего воздействия:
# - р<0,001 по сравнению с контрольными животными, подвергавшимся воздействию стресса

Слайд 48

Влияние активации и блокады постсинаптических 5-НТ1А и 5-НТ2А рецепторов на число

Влияние активации и блокады постсинаптических 5-НТ1А и 5-НТ2А рецепторов на число

АОК у мышей с оппозитными формами поведения