Первичные половые клетки

Содержание

Слайд 2

Слайд 3

Слайд 4

Saitou et al. (2002): экспрессия гена fragilis во время гаструляции (его

Saitou et al. (2002): экспрессия гена fragilis во время гаструляции (его

экспрессия прослеживается на пути миграции предшественников половых клеток). (A. McLaren / Developmental Biology 262 (2003) 1–1513)

McLaren (1999).
6.0 dpc: сигнал (черные стрелки), исходящий из внезародышевой эктодермы (голубая) воздействует на клетки проксимального слоя эпибласта (оранж.), превращая часть из них в предшественников половых клеток (PGC). Во время гаструляции эти клетки движутся в каудальную область первичной полоски и, потом, во внезародышевую область вместе с клетками внезародышевой мезодермы, выселяющейся из первичной полоски).
7.0 dp: внезародышевая мезодерма (желтая) формирует заднюю амниотическую складку (белая область – экзоцелом). Часть(?) предшественников PGC превращается в PGC. Вероятно, это происходит под влиянием дополнительных сигналов, в том числе и из области висцеральной энтодермы).

Выделение линии половых клеток у эмбриона мыши

6,0 dpc 7,0 dpc

6,25 dpc.

6,0 dpc.

6,5 dpc.

7,0 dpc.

7,5 dpc.

To date (2011), only a few genes that mark the onset of germ cell commitment in the epiblast—the outer layer of cells of the embryo—including tissue non-specific alkaline phosphatase (TNAP), Blimp1, Stella and Fragilis—have been used with some success to detect PGC formation in in vitro model systems.

Слайд 5

Первичные половые клетки (ППК) мыши, окраска на щелочную фосфотазу

Первичные половые клетки (ППК) мыши, окраска на щелочную фосфотазу

Слайд 6

Слайд 7

Слайд 8

Мыши из коллекций Jackson’s Laboratories (США), крупнейшего центра, хранящего генетические линии

Мыши из коллекций Jackson’s Laboratories (США), крупнейшего центра, хранящего генетические линии

лабораторных животных:
Рис.1: у мыши окрашены только радужка глаз и уши.
Рис.2: меланоциты отсутствуют на некоторых участках тела мышей.

Линии мышей, несущих мутации, при которых наблюдается снижение численности популяции ППК и нарушение в их миграции:
W – мутации в локусе W Sl (Steel) – мутации в локусе Sl

# локус W несет ген рецептора тирозинкиназы (c-Kit)
# локус Sl кодирует его лиганд (Kit-ligand или Steel factor – SLF).
Высокая активность тирозинкиназы необходима для нормального процесса размножения и миграции ППК и клеток других популяций, мигрирующих в эмбриональный период развития (клетки нервного гребня, кроветворные клетки).

Слайд 9

Слайд 10

С П Е Р М А Т О Г Е Н Е З

С П Е Р М А Т О Г Е Н

Е З
Слайд 11

Слайд 12

Слайд 13

Слайд 14

Слайд 15

Строение стенки семенного канальца Окраска акридиновым оранжевым Erlandsen & Magney, Color

Строение стенки семенного канальца

Окраска акридиновым оранжевым

Erlandsen & Magney, Color Atlas of

Histology

Иммуногистохимическое окрашивание клеток Сертоли
(окрашивание на один из ферментов, участвующих в метаболизме глюкозы – альдоз-редуктазу)

Слайд 16

Слайд 17

Упрощенная схема каспаз-зависимого апоптозного пути в клетках сперматогенного ряда млекопитающих и

Упрощенная схема каспаз-зависимого апоптозного пути в клетках сперматогенного ряда млекопитающих и

человека описывающих три основные этапа (молекулярных механизма): уровень межклеточного взаимодействия (“рецептор смерти”) цитоплазматический уровень (ЭПР) и митохондриальный .

Ruwanpura S M et al. J Endocrinol 2010;205:117-131

© 2011 Society for Endocrinology

Слайд 18

Периодизация сперматогенеза: 1 период: Митотическое размножение мужских половых клеток. В этот

Периодизация сперматогенеза:
1 период: Митотическое размножение мужских половых клеток. В этот период

половые клетки называют гониями (при сперматогенезе – сперматогониями)
2 период: Мейоз. Этот период включает в себя профазу мейоза и два мейотических деления – редукционное и эквационное. Мужскую половую клетку в этот период называют сперматоцитом.
3 период: Спермиогенез - период, во время которого происходят постмейотические цитологические преобразования гаплоидной клетки - сперматиды, приводящие к формированию сперматозоида.

Последовательность событий при сперматогенезе

Слайд 19

Слайд 20

Слайд 21

Erlandsen & Magney, Color Atlas of Histology Ультраструктура стенки семенного канальца

Erlandsen & Magney, Color Atlas of Histology

Ультраструктура стенки семенного канальца

Слайд 22

Слайд 23

Слайд 24

Синаптонемный комплекс Сборка синептонемного комплекса в лептотене (1) и зиготене (2). Строение СК (пахитена)

Синаптонемный комплекс

Сборка синептонемного комплекса в лептотене (1) и зиготене (2).

Строение СК

(пахитена)
Слайд 25

Разрывы в одной из хроматид каждой гомологичной хромосомы (синим показана отцовская

Разрывы в одной из хроматид каждой гомологичной хромосомы (синим показана отцовская

хромосома, розовым – материнская).
Перекрест хроматид. Недостающий участок достраивается по коньюгировавшей цепи.
Результат: гомологичные хромосомы после обмена участками.

Схема кроссинговера.

Во время этого процесса, происходящего в половых клетках на стадии профазы мейоза, гомологичные хромосомы обмениваются своими участками.
В результате хромосомы гамет не являются идентичными хромосомам соматических клеток данной особи: часть хромосом содержит как гены, полученные от отца, так и гены полученные от матери.
Таким образом, при кроссинговере увеличивается генетическое разнообразие гамет, что дает большее количество генетических комбинаций в следующем поколении.

Слайд 26

Слайд 27

Слайд 28

Сперматозоид – специализированная клетка Поверхностные белки Акросома Ядро Белки цитоплазмы Центросома Митохондрии Жгутик

Сперматозоид – специализированная клетка

Поверхностные белки

Акросома

Ядро

Белки цитоплазмы

Центросома

Митохондрии

Жгутик

Слайд 29

Гормональная регуляция сперматогенеза

Гормональная
регуляция
сперматогенеза

Слайд 30

Гомеостатические механизмы обратной связи: 1. Длинная петля обратной связи: стероидные гормоны

Гомеостатические механизмы обратной связи:
1. Длинная петля обратной связи: стероидные гормоны

гонады воздействуют на секрецию гормонов гипоталамуса и гипофиза
2. Короткая петля обратной связи: гонадотропные гормоны гипофиза воздействуют на секрецию рилизинг-факторов гипоталамуса
3. Ультракороткая петля обратной связи: гормоны гипоталамуса регулируют собственную секрецию в пределах центральной нервной системы.
Слайд 31

Система обратных связей, поддерживающая тоническую секрецию гормонов гипоталамуса и гипофиза и

Система обратных связей, поддерживающая тоническую секрецию гормонов гипоталамуса и гипофиза и

постоянный уровень тестостерона в крови

При повышении уровня тестостерона в крови уменьшается выработка гормонов гипоталамуса и гипофиза (отрицательная обратная связь)
При снижении уровня гормонов гипофиза в крови снижается и выработка стероидных гормонов гонадой (положительная прямая связь)
При понижении уровня тестостерона в крови увеличивается выработка гормонов гипоталамуса и гипофиза. (отрицательная обратная связь)

Слайд 32

Схема гормональной регуляции сперматогенеза при половом созревании Клетки гипоталамуса становятся менее

Схема гормональной регуляции сперматогенеза при половом созревании

Клетки гипоталамуса становятся менее чувствительными

к отрицательной обратной связи.
В результате увеличивается выработка рилизинг-фактора в гипоталамусе, гонадотропных гормонов в аденогипофизе и выработка тестостерона в семеннике.
Выработка тестостерона постепенно увеличивается, до тех пор, пока система не выйдет на новый устойчивый уровень, характерный для взрослого организма.
Слайд 33

Ruwanpura S M et al. J Endocrinol 2010;205:117-131 Сперматогенез у грызунов

Ruwanpura S M et al.
J Endocrinol 2010;205:117-131

Сперматогенез у грызунов

Диаграмма, суммирующая

воздействие ФСГ и тестостерона на сперматогенез:
Слева – существующие экспериментальные данные (черные рамки)
Справа – нерешенные вопросы (красные рамки)
Слайд 34

Ruwanpura S M et al. J Endocrinol 2010;205:117-131 © 2011 Society

Ruwanpura S M et al. J Endocrinol 2010;205:117-131

© 2011 Society for

Endocrinology

Сперматогенез у человека

Диаграмма, суммирующая воздействие ФСГ и тестостерона на сперматогенез:
Слева – существующие экспериментальные данные (черные рамки)
Справа – нерешенные вопросы (красные рамки)

Слайд 35

О О Г Е Н Е З

О О Г Е Н Е З

Слайд 36

1. – Медулярная область яичника (medulla ovari). 2. - Кортикальная область

1. – Медулярная область яичника (medulla ovari).
2. - Кортикальная область яичника

(cortex ovari).
3. - Остаток мезентерия яичника.
4. - Белочная оболочка.
5. - Примордиальные фолликулы
6. - Первичные фолликулы
7. - Вторичные или лакунарные фолликулы
8. - Третичный или преовуляторный фолликул (или антральный фолликул, или Граафов пузырек (в честь анатома Д.Р.Граафа, впервые описавшего его)
9. - Атретические фолликулы: Большая часть фолликулов, вступивших вступивший в рост, погибают на разных этапах фолликулогенеза. На месте погибших вторичных или третичных фолликулов формируются так называемые белые тела.
Слайд 37

Слайд 38

Стадии роста фолликулов (по McNatty et al. 1999, 2007, Montgomery et

Стадии роста фолликулов
(по McNatty et al. 1999, 2007, Montgomery

et al. 2001, Barnett et al. 2006, Edson et al. 2009)
Слайд 39

Атрезия фолликулов

Атрезия фолликулов

Слайд 40

Слайд 41

Слайд 42

Взаимодействие ооцита с фолликулярными клетками

Взаимодействие ооцита
с фолликулярными клетками

Слайд 43

Слайд 44

Слайд 45

Стероидные гормоны яичника

Стероидные гормоны яичника

Слайд 46

Слайд 47

Epidermal growth factor (EGF)-like growth factors in the human follicular fluid.

Epidermal growth factor (EGF)-like growth factors in the human follicular fluid.

Luteinizing (LH) induces the expression of Areg in the preovulatory follicle, and AREG (amphiregulin) acts in an autocrine and paracrine manner to mediate LH effects throughout the follicle, including the promotion of oocyte meiotic resumption and cumulus expansion. Areg expression is also upregulated in granulosa cells by prostaglandin E2 (PGE2);79,81 at a time preceding ovulation, AREG can also induce the expression of its mRNA in cumulus cells by the PGE2-PGE2 receptor subtype (PTGER2) pathway.81 AREG protein is present in abundant levels in the human follicular fluid85(A.M. Zamah et al, unpublished data). EGF and transforming growth factor alpha (TGF-α) protein levels are very low or undetectable in the fluid and higher in serum, indicating that the presence of these factors in the follicular fluid is likely serum derived. Whether epiregulin (EREG) and betacellulin (BTC) are also present in the fluid remains to be determined.

Пик ЛГ активирует комплекс паракринных и аутокринных регуляторов, в том числе активирует сеть EGF

Hsieh M, Zamah AM, Conti M. Epidermal growth factor-like growth factors in the follicular fluid:
role in oocyte development and maturation. Semin Reprod Med. 2009 Jan;27(1):52-61. doi: 10.1055/s-0028-1108010.

Слайд 48

The potential physiological roles of intra-ovarian BMPs in regulating human ovarian

The potential physiological roles of intra-ovarian BMPs in regulating human ovarian

functions, including steroidogenesis, activin production, cumulus–oophorus complex formation and expansion, cell–cell communication, ovulation and luteolysis are shown.

Schematic diagram summarizing functional roles of BMPs and GDF9 in the human ovary.

BMP, bone morphogenetic protein;
COC, cumulus–oophorus complex;
Cx43, connexin 43;
GC, granulosa cell;
HAS2, hyaluronan synthase type 2;
PTX3, pentraxin 3;
StAR, steroidogenic acute regulatory protein.

Слайд 49

Schematic diagram summarizing potential roles of GDF8 in a human growing

Schematic diagram summarizing potential roles of GDF8 in a human growing

follicle.

In this follicular microenvironment, the locally produced GDF8 may promote aromatase/estradiol and FSHR expression, suppress StAR/progesterone and LHR expression and down-regulate PTX3 expression. In addition, GDF8 induces the expression of CTGF, which contributes to the suppression of GC proliferation and the increase in LOX activity. 3βHSD, 3β-hydroxysteroid dehydrogenase; CTGF, connective tissue growth factor; ECM, extracellular matrix; LOX, lysyl oxidase; P450scc, P450 side-chain cleavage enzyme; PTX3, pentraxin 3; FSHR, FSH receptor; LHR, LH receptor.

Chang HM, Qiao J, Leung PC. Hum Reprod Update. 2016 Dec;23(1):1-18.

Слайд 50

Слайд 51

Слайд 52

Овуляторный фолликул

Овуляторный фолликул

Слайд 53

Гинекологу Жаку Доннезу (Jacques Donnez) из Католического университета Лувьян (Catholic University

Гинекологу Жаку Доннезу (Jacques Donnez) из Католического университета Лувьян (Catholic University of Louvain)

в Брюсселе повезло увидеть процесс овуляции прямо во время операции по гистерэктомии. И не только увидеть, но и снять при помощи камеры, записывающей операцию. Яйцеклетка, попавшая в кадр, принадлежала 45−летней бельгийке.
Кстати, по словам автора, ценные кадры, которые он получил, позволяют теперь с уверенностью утверждать, что яйцеклетка покидает фолликул не мгновенно, а за 15 минут. Это опровергает теории о взрывной, внезапной овуляции

Несмотря на самое современное эндоскопическое оборудование, до сих пор овуляцию ученые наблюдали только у животных

Слайд 54

Слайд 55

Морфология ооцита человека (клиническая практика ВРТ) Ооцит с зародышевым пузырьком (germinal

Морфология ооцита человека
(клиническая практика ВРТ)

Ооцит с зародышевым пузырьком (germinal vesicule):


диплотена-диакинез профазы мейоза (2n4c)

Ооцит с разрушившейся оболочкой ядра (зародышевого пузырька):
Метафаза 1-го деления созревания (2n4c)

Зрелый ооцит с выделившимся первым редукционным тельцем:
диплотена-диакинез профазы мейоза
Ооцит - n2c
Редукционное тельце – n2c

Слайд 56

http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0955067410001158 Веретено первого деления мейоза формируется близки к центру ооцита и

http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0955067410001158

Веретено первого деления мейоза формируется близки к центру ооцита и мигрирует

к на периферию в кортикальную область (в ту часть, которая ближе к веретену). Веретено 2-го деления мейоза располагается в кортикальной зоне параллельно поверхности ооцита и поворачивается только после оплодотворения
Схема предположительного механизма транслокации веретена в кортикальную область (актин-зависимый процесс) (I) Contraction of anti-parallel actin filaments connecting the cortex to the spindle by bipolar myosin II mini thick filaments, (II) cargo-like transport of the spindle along actin filaments with barbed ends oriented toward the cortex, with myosin II localized at the spindle pole (III) actin polymerization-driven motility from the rear. Actin – red, microtubules – green, chromosomes – blue, myosin II – black. Outer circle = zona pellucida.

Веретено 1 и 2 деления мейоза
(ооцит мыши)