Микробиологический контроль ЛС

Содержание

Слайд 2

АКТУАЛЬНОСТЬ Особое место в фармацевтическом анализе занимают биологические методы исследований фармацевтических

АКТУАЛЬНОСТЬ

Особое место в фармацевтическом анализе занимают биологические методы исследований фармацевтических препаратов,

относящиеся в первую очередь к области фармакологии и микробиологии.
Особенностью микробиологических видов анализов является специфика объекта исследования – живого микроорганизма, обладающего индивидуальными свойствами. К наиболее значимым особенностям ЛС, влияющим на результаты анализа, относятся следующие:
Наличие антимикробного действия самих ЛС или их компонентов, а также присутствие в некоторых из них консервантов, препятствующих выявлению микроорганизмов.
Опережающий рост сопутствующей микрофлоры, затрудняющий определение микроорганизмов-контаминантов.
Возможность присутствия в аналитических образцах микроорганизмов в «стрессовом» состоянии под воздействием условий технологического процесса производства ЛС, и неравномерное распределение контаминантов в образцах.
Слайд 3

Основными факторами, влияющими на вариабельность результатов микробиологических исследований, являются: специфичность пробы

Основными факторами, влияющими на вариабельность результатов микробиологических исследований, являются: специфичность пробы

(физико-химические свойства и биологические особенности выделяемой популяции микроорганизмов), компетентность персонала и условия его работы, отбор образцов и подготовка пробы, условия инкубации, характеристики используемых питательных сред. Последние три фактора подлежат обязательной стандартизации и валидации.

ФАКТОРЫ

Слайд 4

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ Уровень микробной чистоты – один из основных показателей качества

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ

Уровень микробной чистоты – один из основных показателей качества фармацевтической

продукции. По этому показателю все препараты делят на:
•Стерильные – препараты, в которых не допускается содержание жизнеспособных клеток микроорганизмов (~ 20 % от общего количества ЛС);
• Нестерильные – препараты, в которых допускается содержание живых микроорганизмов, требования к количеству и качественному составу которых зависит от лекарственной формы и способа введения препарата и нормируется соответствующей документацией (~ 80 % от общего количества ЛС).
Слайд 5

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ НЕСТЕРИЛЬНЫХ ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ Основные задачи микробиологического контроля нестерильной продукции:

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ НЕСТЕРИЛЬНЫХ ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ

Основные задачи микробиологического контроля нестерильной продукции: 1.

Имеются ли в образце жизнеспособные микроорганизмы (бактерии, грибы)? (качественный анализ)
2. Если да, то в каком количестве? (количественный анализ )
3. Что именно? (идентификационный анализ).
Микробиологические требования к нестерильной продукции: - должна содержать ограниченное количество микроорганизмов; - не должна содержать определенные виды микроорганизмов; - допустимое количество и виды микроорганизмов зависят от лекарственной формы и пути введения препарата;
Слайд 6

КРИТЕРИИ ПРИЕМЛЕМОСТИ ДЛЯ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЙ ЧИСТОТЫ НЕСТЕРИЛЬНЫХ ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ

КРИТЕРИИ ПРИЕМЛЕМОСТИ ДЛЯ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЙ ЧИСТОТЫ НЕСТЕРИЛЬНЫХ ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ

Слайд 7

1.Метод высева на чашки Петри с питательной средой: - метод глубинного

1.Метод высева на чашки Петри с питательной средой:
- метод глубинного

посева
- метод поверхностного посева
2. Метод мембранной фильтрации
3. Метод наиболее вероятного числа (наименее точный метод, используется для продуктов с очень низкой бионагрузкой).
Принцип: методы основаны на посеве на/в питательные среды определенного количества образца препарата, инкубировании, подсчете выросших колоний и выявлении специфических микроорганизмов, интерпретации полученных результатов.

МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЙ ЧИСТОТЫ НЕСТЕРИЛЬНЫХ ЛС

Слайд 8

1. Проверка пригодности питательных сред А. Проверке подлежит каждая партия приготовленных

1. Проверка пригодности питательных сред
А. Проверке подлежит каждая партия приготовленных

питательных сред (~ 5% от количества в партии);
Б. Проверка стерильности: термостатируют образец каждой серии питательной среды после ее стерилизации в течении 5-ти суток при 30-35° С (если среда используется для выявления бактерий) и 20-25° С (если среда используется для выявления грибов). По истечении заданного срока на ( в) питательных средах должны отсутствовать визуально определяемые признаки роста микроорганизмов.
В. Проверка ростовых свойств:
• Ростовые качества питательных сред обеспечиваются двумя факторами: наличием питательных веществ (пептиды, углеводы) и факторов роста, таких как аминокислоты, витамины, микроэлементы и пр.; отсутствием ингибиторов роста микроорганизмов, например, остатков протеолитических ферментов, примесей тяжелых металлов, антибиотических веществ, и т.д.;
• Контролем при определении ростовых качеств среды служит: стандартная среда с гарантированными ростовыми свойствами, на котором правильно проявляется количественный и качественный рост микроорганизмов (морфология колоний); в случае отсутствия стандартной среды для контроля ростовых свойств в качестве контроля используют некоторое количество среды из предыдущей партии.

ЭТАПЫ

Слайд 9

2. Проверка наличия /отсутствия антимикробного действия ЛС. -Некоторые ЛС обладают выраженным

2. Проверка наличия /отсутствия антимикробного действия ЛС.
-Некоторые ЛС обладают выраженным

антимикробным действием:
•Специфическое антимикробное действие: антибиотики, антисептики, производные фторхинолонов, сульфаниламиды и др.
3. Нейтрализация (устранение) антимикробного действия:
•Разведения исходного образца
•Добавление нейтрализующего агента (специфического или неспецифического) в растворитель. •Комбинация двух методов.
•Мембранная фильтрация.

ЭТАПЫ

Слайд 10

- готовят образец из 10 г продукта (растворяют в отношении 1:10

- готовят образец из 10 г продукта (растворяют в отношении 1:10

в буфере или питательной среде) с учетом результатов испытаний по определению антимикробного действия;
- количество образца, эквивалентное 1 г исходного продукта, наносят на каждый из двух мембранных фильтров и немедленно фильтруют, при необходимости промывают;
- для определения ОКА один из мембранных фильтров переносят на поверхность агаризованной среды на основе гидролизата казеина и соевых бобов (или №1). Чашки инкубируют в течение 3-5 суток при температуре 30 - 35° С;
- для определения ОКГ второй из мембранных фильтров переносят на поверхность декстрозного агара Сабуро (или №2). Чашки инкубируют в течение 5-7 суток при температуре 20-25° С - рассчитывают число КОЕ (ОКА и ОКГ) в 1г или 1 мл испытуемого продукта и делают вывод о соответствии его качества требованиям спецификации.

МЕМБРАННАЯ ФИЛЬТРАЦИЯ

Слайд 11

Пример: выявление Escherichia coli (метод чашечного подсчета) 1. Образец готовят аналогично

Пример: выявление Escherichia coli (метод чашечного подсчета)
1. Образец готовят аналогично

как и для выявления ОКА и ОКГ
2. Испытанию подвергают количество, эквивалентное 1 г или 1 мл продукта
3. Инокулируют подходящее количество бульона на основе гидролизата казеина и соевых бобов, перемешивают, инкубируют при температуре 30-35°С в течение 18-24 ч.
4. Встряхивают контейнер, переносят 1 мл образца, полученного при выполнении п.3, в 100 мл бульона Макконки и инкубируют при температуре 42-44°С в течение 24 - 48 ч. – обогащение
5. Пересевают подходящее количество образца, полученного при выполнении п.4, на чашки с агаром Макконки и инкубируют при температуре 30-35°С в течение 18-72 ч. – индикация
6. Интерпретация результатов: рост характерных колоний свидетельствует о возможном присутствии Escherichia coli. Результат подтверждается идентификационными испытаниями.
7. Продукт выдерживает испытания, если подобные колонии не обнаруживаются или испытания идентификации дают отрицательный результат.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЙ ЧИСТОТЫ : ИСПЫТАНИЯ НА НАЛИЧИЕ СПЕЦИФИЧЕСКИХ МИКРООРГАНИЗМОВ

Слайд 12

СХЕМА ОПРЕДЕЛЕНИЯ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЙ ЧИСТОТЫ

СХЕМА ОПРЕДЕЛЕНИЯ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЙ ЧИСТОТЫ

Слайд 13

Стерильность – отсутствие живых микроорганизмов. Для стерильных лекарственных форм наличие микроорганизмов,

Стерильность – отсутствие живых микроорганизмов. Для стерильных лекарственных форм наличие микроорганизмов,

даже в малом количестве, может стать летальным, учитывая беспрепятственное попадание микроорганизмов в кровь или на слизистые оболочки организма, при условии ослабленного иммунитета человека.

Испытание применяется для препаратов, которые должны быть стерильны:
•ЛС для парентерального применения (растворы, лиофильно высушенные и стерильно расфасованные порошки для инъекций и инфузий);
•Офтальмологические ЛС;
•Растворы антисептиков для наружного применения;
•Мази, гели для наружного применения (для нанесения на раневую поверхность);

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ СТЕРИЛЬНОСТИ ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ

Слайд 14

Методы определения стерильности: • Мембранная фильтрация – наиболее предпочтительный метод, если

Методы определения стерильности:
• Мембранная фильтрация – наиболее предпочтительный метод, если

испытуемый препарат фильтруется;
• Метод прямого посева.

Питательные среды, используемые для определения стерильности:
• Жидкая тиогликолевая среда: снижает окислительно-восстановительный потенциал и способствует росту анаэробных микроорганизмов
Выявление анаэробных бактерий
- Аэробных бактерий
• Жидкая среда на основе гидролизата казеина и соевых бобов ( среда Сабуро)
- Выявление грибов
- Выявление аэробных бактерий.

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ СТЕРИЛЬНОСТИ ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ

Слайд 15

СХЕМА ОПРЕДЕЛЕНИЯ СТЕРИЛЬНОСТИ

СХЕМА ОПРЕДЕЛЕНИЯ СТЕРИЛЬНОСТИ