Е-РОК - Тест розеткообразования — классический метод определения количества Тлимфоцитов в периферической крови

Сентябрь 12, 2022

Главная
Медицина
Е-РОК - Тест розеткообразования — классический метод определения количества Тлимфоцитов в периферической крови

Содержание

2. Е-РОК Тест розеткообразования — классический метод определения количества Т-лимфоцитов в периферической крови — основан на наличии
3. Е-РОК: Материалы Материалы и оборудование. Для работы необходимы: 0,15 М NaCl, среда Игла-MEM с рН 7,4,
4. Получение лимфоцитов Для определения РОК необходимы лимфоциты, по возможности минимально загрязненные аутологическими эритроцитами. Для получения лимфоцитов
5. Инкубация Из трижды отмытых в 0,15 М NaCl ЭБ делают 0,5% суспензию в среде Игла-MEM. Равные
6. Оценка результатов Важным этапом является ресуспендирование осадка. Требуется определенный опыт, чтобы при покачивании и вращении центрифужных
7. Модификации Сокращение используемых объемов крови достигается следующей модификацией: в пробирку вносят 200 мкл среды Игла-МЕМ, 100
8. Максимально АЭТ — ЭБ могут храниться в течение недели - при 4°С. Для получения розеток смешивают
9. Для реакции торможения розеткообразования используют суспензию лимфоцитов (4х106/мл) в среде Игла-MEM. В пробирку вносят 100 мкл
10. Известен микрометод определения РОК в планшетах Терасаки. Под слоем вазелинового масла смешивают 2 мкл суспензии лимфоцитов
12. Е-Рок(проще) Кровь обследуемого пациента в количестве 10 мл вносят в пробирку с раствором гепарина и осторожно
13. Полученную смесь инкубируют при 37°С в течении 10 минут и снова центрифугируют, после чего выдерживают в
14. Определение активных Т-лимфоцитов Активные Т-лимфоциты — это клетки, способные к спонтанному розеткообразованию без предварительной инкубации. Ход
15. Определение субпопуляций Т-лимфоцитов Определение субпопуляций Т-лимфоцитов основано на выявлении так называемых теофиллинчувствительных и теофиллинрезистентных лимфоцитов. Клеточные
16. Методика количественного определения Т-супрессоров и Т-хелперов мало отличается от описанного выше теста розеткообразования, за исключением добавления
18. Среда MEM (Minimum Essential Medium), или среда Игла была разработана Гари Иглом и является наиболее распространенной
19. Метод оценки В-лимфоцитов Метод ЕАС-розеток предназначен для выявления рецепторов к комплементу на поверхности мононуклеаров (лимфоциты, моноциты).
20. Материалы и оборудование Силиконизированные и центрифужные пробирки (25 и 10 мл), пастеровские пипетки, гематокрит-ная центрифуга, центрифуга
21. Цельную кровь барана, разведенную раствором Олсвера О + О. сохраняют до 8 дней в холодильном шкафу
22. Выделение лимфоцитов Гепаринизированную кровь в количестве 2—4 мл (100 ЕД гепарина на 1 мл) разводят средой
23. Сенсибилизация эритроцитов барана ЭБ, смешанные с раствором Олсвера, осаждают центрифугированием и дважды отмывают ФСБ или 0,15
24. Наилучшие результаты получаются при разведении 1 : 500. При использовании инактивированных кроличьих антисывороток к антигену Форссмана
26. Среда Олсвера р-р, предназначенный для сохранения эритроцитов. Состав: 24,6 г глюкозы, 9,6 г натрия цитрата, 5,04
27. Инкубация Суспензию эритроциты — антитела — комплемент (ЕАС) с гематокритом 0,005 (0,5 мл) в центрифужных пробирках
28. Оценка результатов Клеточную суспензию (1—2 капли) наносят на сетку счетной камеры, используя для этого пипетку с
30. АНТИГЕНПРЕЗЕНТИРУЮЩИЕ КЛЕТКИ Молекулы MHC контролируют иммунный ответ. Так, MHC-II участвуют в презентации антигенов T-клеткам (рис. 7-3,
31. Профессиональные АПК. Молекулы MHC-II экспрессированы только на определённых клетках, которые называют профессиональными АПК. Таких клеток у
32. Эндотелий тоже может выполнять функции АПК. Вероятно, экспрессия комплексов пептид-MHC на клетках эндотелия служит специфическим сигналом,
34. Разновидности ДК: Миелоидные Происходят из моноцитов и экпрессируют маркёр CD11c Их, вероятно, можно рассматривать как разновидность
36. Распознавание антигена рецептором T-лимфоцита. Каждая молекула MHC-II состоит двух цепей - α и β. При помощи
37. Разновидности ДК: Плазмоцитоидные ДК происходят от общей лимфоидной клетки-предшественника, из которой развиваются также T- и B-лимфоциты,
38. Эндоцитоз. ДК активно и непрерывно поглощают вещества из окружающей среды. При отсутствии патогена ДК поглощают вещества
39. Активация. ДК активируются (созревают) при проникновении патогена в организм и превращаются в зрелые ДК. В распознавании
40. Макрофаг-моноцит: Функция фагоцитарная защита организма против микробной инфекции; токсический эффект метаболитов макрофагов на паразитов в организме
41. В тканях моноциты дифференцируются в тканевые макрофаги. Моноциты - макрофаги имеют аэробный гликолиз, обеспечивающий энергией их
42. Цитотоксическое действие на опухолевые клетки, токсоплазмы (кокцидии, паразитические простейшие), лейшмании и возбудителей малярии макрофаги оказывают супероксидом,
43. Макрофаги человека секретируют в кровь и тканевую жидкость более 100 биологически активных веществ с молекулярной массой
44. КОЛИЧЕСТВЕННОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ СУБПОПУЛЯЦИЙ ЛИМФОЦИТОВ КРОВИ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ
45. ОБОСНОВАНИЕ Подразделение лимфоцитов человека на Т-лимфоциты, В-лимфоциты и естественные киллеры основано на их биологических функциях и
46. ЦЕЛЬ Подсчёт клеток определённой популяции, или спектра Аг, экспрессированных на данных клетках.
47. ПОКАЗАНИЯ Метод используют для количественной и качественной характеристики субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови при наличии или
48. ПОДГОТОВКА Из вены пациента берут кровь в пробирку с гепарином (20 Ед/мл).
49. МЕТОДИКА Кровь обрабатывают лизирующим раствором для разрушения эритроцитов или с помощью градиентного центрифугирования выделяют фракцию мононуклеарных
50. ИНТЕРПРЕТАЦИЯ Анализ позволяет оценить количество лимфоцитов в субпопуляции, результаты сопоставляют с нормативными показателями, рассчитывают соотношение Т-хелперов
52. Скачать презентацию

Слайд 2

Е-РОК
Тест розеткообразования — классический метод определения количества Т-лимфоцитов в периферической крови

— основан на наличии на мембране Т-лимфоцитов всех субпопуляций рецепторов к эритроцитам барана и способности Т-лимфоцитов образовывать с ними прочные комплексы (так называемые розетки).

Слайд 3

Е-РОК: Материалы
Материалы и оборудование. Для работы необходимы: 0,15 М NaCl, среда Игла-MEM

с рН 7,4, подведенная с помощью 1 М NaOH, гепарин без консервантов (например, Gedeon Richter, Будапешт), раствор фиколл — визотраст с плотностью 1,077 г/мл, трипановый синий 0,2% в 0,15 М NaCl.
Также нужно иметь центрифужные пробирки на 10 мл (силиконизированные), пастеровские пипетки, центрифуги, гематокритную центрифугу, камеру для подсчета клеток, микроскоп с фазово-контрастной оптикой, ротор для ресуспендирования клеток.

Слайд 4

Получение лимфоцитов
Для определения РОК необходимы лимфоциты, по возможности минимально загрязненные аутологическими

эритроцитами. Для получения лимфоцитов подходит метод Бейюма :2 мл гепаринизированной крови (100 ЕД гепарина/мл) разводят 6 мл среды Игла-MEM и осторожно наслаивают в центрифужную пробирку на 2 мл сепарирующего раствора. Центрифугируют 40 минут при 600 g. Лимфоциты скапливаются в виде полосы белого цвета над сепарирующим раствором. Их отсасывают пастеровской пипеткой и отмывают средой Игла-MEM, центрифугируют 3 раза по 10 минут при 600 g и еще один раз при 200 g, устанавливают плотность суспензии, равную Зх106 клеток/мл.

Слайд 5

Инкубация
Из трижды отмытых в 0,15 М NaCl ЭБ делают 0,5% суспензию

в среде Игла-MEM. Равные объемы суспензии лимфоцитов и ЭБ (например, 0,5 мл) смешивают в центрифужной пробирке, центрифугируют в течение 5 минут при 200 g и сохраняют при 4°С в течение ночи.

Слайд 6

Оценка результатов
Важным этапом является ресуспендирование осадка. Требуется определенный опыт, чтобы при

покачивании и вращении центрифужных пробирок не разрушить розетки. В нашей лаборатории для ресуспендирования пользовались ротором (угол качания 45°, 6 об/мин, 15 минут). При помощи пастеровской пипетки заполняют счетную камеру и в условиях фазового контраста подсчитывают по меньшей мере 200 лимфоцитов с целью определения РОК- При подсчете РОК учитывают лимфоциты с 3 и более адгезировавшими эритроцитами. Жизнеспособность клеток определяют окрашиванием 0,2% раствором трипанового синего. Розетки фиксируют 0,8% раствором глутарового альдегида. В течение 1—2 недель розетки можно хранить в 1% агарозе.

Слайд 7

Модификации
Сокращение используемых объемов крови достигается следующей модификацией: в пробирку вносят 200

мкл среды Игла-МЕМ, 100 мкл суспензии лимфоцитов (3х105 клеток) и 100 мкл 5% суспензии ЭБ, инкубируют 10 мин при 37 °С, ресуспендируют (ротор), центрифугируют 15 минут при 200 g и оставляют на ночь при 4°С. В среднем наблюдается 61 ± 8% РОК. Обработка эритроцитов АЭТ (2-аминоэтилизотиоурония гидробромид) стабилизирует розеткообразование и дает до 80% розеток. Приготовление ЭБ, обработанных АЭТ: 1 мл осадка отмытых ЭБ смешивают с 4 мл раствора АЭТ (0,402 г АЭТ в 10 мл дистиллированной Н20, рН подводят 4М NaOH до 9,0). Смесь инкубируют 15 минут при 37 °С, затем отмывают трижды в 0,15М NaCl. Осадок суспендируют в среде Игла-МЕМ с 20% сыворотки эмбрионов коров до получения 10%. суспензии ЭБ.

Слайд 8

Максимально АЭТ — ЭБ могут храниться в течение недели - при

4°С. Для получения розеток смешивают 0,5 мл суспензии лимфоцитов (2х106/мл), 0,25 мл сыворотки эмбрионов коров и 6—8 капель АЭТ — ЭБ, центрифугируют 5 минут при 25 g и оставляют на ночь при 4°С. ЭБ можно также стабилизировать ЧСА: 50 мкл суспензии лимфоцитов (2х106/мл) смешивают с 50 мкл 1% суспензии ЭБ и 20 мкл человеческий сывороточный альбумин (20% в среде Игла-MEM) в маленьких стеклянных пробирках инкубируют 75 мин при 4°С, затем добавляют 200 мкл среды и ведут подсчет. Добавление 20 мкл смеси этидий-бромида с акридиновым оранжевым позволяет дифференцировать живые (зеленое окрашивание) и неживые клетки (красное окрашивание). Результаты, полученные этим методом, коррелируют на 95% с результатами, полученными при помощи метода моноклональных АТ (антитело) (ОКТЗ).

Слайд 9

Для реакции торможения розеткообразования используют суспензию лимфоцитов (4х106/мл) в среде Игла-MEM.

В пробирку вносят 100 мкл суспензии лимфоцитов, 200 мкл антилимфоцитарных АГ в разведении 1 : 2000—1 : 256000 инкубируют 90 мин при 37°С, добавляют 100 мкл 0,5% суспензии ЭБ, инкубируют 10 минут при 37°С, центрифугируют 5 минут при 200 g, выдерживают 90 минут на ледяной бане. После осторожного ресуспендирования проводят подсчет розеток. Минимальную концентрацию, при которой отмечается торможение антилимфоцитарных АТ (антитело) (концентрация, вызывающая 25% снижение розеткообразования по сравнению с контролем) определяют графически.

Слайд 10

Известен микрометод определения РОК в планшетах Терасаки. Под слоем вазелинового масла

смешивают 2 мкл суспензии лимфоцитов (8х103клеток), 1 мкл суспензии ЭБ, 3 мкл 2% раствора альбумина, центрифугируют и после 1 часа инкубации при 4°С производят подсчет, используя в качестве фиксатора глутаровый альдегид.

Слайд 11

Слайд 12

Е-Рок(проще)
Кровь обследуемого пациента в количестве 10 мл вносят в пробирку с

раствором гепарина и осторожно наслаивают на смесь фиколл-гипака, который способствует выделению лимфоцитов, и центрифугируют. После центрифугирования эритроциты оседают на дно пробирки, а лимфоциты располагаются тонким слоем на границе раствора фиколл-гипака и плазмы. Взвесь лимфоцитов осторожно извлекают из этого слоя (интерфазы), доводят до концентрации 2-4x10^6/мл (2-4x10^9/л) и смешивают с взвесью эритроцитов барана в соотношении 1:1.

Слайд 13

Полученную смесь инкубируют при 37°С в течении 10 минут и снова

центрифугируют, после чего выдерживают в холодильнике при температуре 4 °С в течение нескольких часов. Подсчет клеток производят в камере Горяева при люминесцентной микроскопии. Подсчитывают число “розеток” на 100 лимфоцитов и определяют процентное содержание Т-лимфоцитов. Для определения абсолютного количества Т-лимфоцитов в день исследования производят общий клинический анализ крови.

Слайд 14

Определение активных Т-лимфоцитов
Активные Т-лимфоциты — это клетки, способные к спонтанному розеткообразованию

без предварительной инкубации. Ход исследования тот же, что и при определении общего числа Т-лимфоцитов, за исключением этапа инкубации. В норме в периферической крови содержится от 23 до 40% активных Т-лимфоцитов (в среднем 34,6±1,9%).

Слайд 15

Определение субпопуляций Т-лимфоцитов
Определение субпопуляций Т-лимфоцитов основано на выявлении так называемых теофиллинчувствительных

и теофиллинрезистентных лимфоцитов. Клеточные мембраны Т-супрессоров, как было сказано выше, имеют рецепторы к теофиллину, который при взаимодействии с клеткой ингибирует реакцию спонтанного розеткообразования с эритроцитами барана. Т-хелперы таких рецепторов не содержат, поэтому при взаимодействии с эритроцитами барана даже при добавлении теофиллина образуются “розетки”.

Слайд 16

Методика количественного определения Т-супрессоров и Т-хелперов мало отличается от описанного выше

теста розеткообразования, за исключением добавления в инкубационную среду раствора теофиллина. При этом Т-супрессоры (теофиллинчувствительные клетки) теряют способность розеткообразования с эритроцитами барана, а Т-хелперы (теофиллинрезистентные клетки) такую способность сохраняют

Слайд 17

Слайд 18

Среда MEM (Minimum Essential Medium), или среда Игла была разработана Гари Иглом

и является наиболее распространенной средой для культивирования клеток . Среда МЕМ содержит 13 аминокислот, 6 водорастворимых витаминов, холин и инозит, выполняющие роль углеводородного субстрата. Есть модификации среды МЕМ с солями Эрла и Хэнкса, а также α-модификация среды MEM с содержанием всех 21 аминокислот и солями Эрла.

Планшет Терасаки

Среда МЕМ

Слайд 19

Метод оценки В-лимфоцитов
Метод ЕАС-розеток предназначен для выявления рецепторов к комплементу на

поверхности мононуклеаров (лимфоциты, моноциты). Эритроциты, сенсибилизированные амбоцептором и. «нагруженные» комплементом, связываются с мембраной мононуклеаров, содержащих рецепторы комплемента, с образованием розеток. Рецепторы взаимодействуют преимущественна с компонентом СЗ.

Слайд 20

Материалы и оборудование
Силиконизированные и центрифужные пробирки (25 и 10 мл), пастеровские

пипетки, гематокрит-ная центрифуга, центрифуга Т-23, ротор (10—20 об/мин), пикнометр и аналитические весы, или весы Вестфаля (Johannes-Hammer, Лейпциг), камера для подсчета клеток (Вűrkеr или другой тип), седиментационная камера по Sayk (Dorenburg, Берлин), микроскоп, водяные бани на 37°С и 56°С.

Слайд 21

Цельную кровь барана, разведенную раствором Олсвера О + О. сохраняют до

8 дней в холодильном шкафу при 4°С. Также необходимо иметь кроличьи гемолизины против эритроцитов барана, свежую мышиную сыворотку, 0, 15М NaCl, среду Игла, изотонический буфер для культивирования клеток, гепарин, визотраст 370, декстрансульфат (натриевая соль, отн. мол. масса 500). рН среды Игла и изотонического раствора для культивирования клеток доводят до 7,3—7,4. Готовят разделяющий раствор следующего состава:
100 мл раствора декстрансульфата в воде (60 г/л) 20 мл визотраста, 30 мл бидистиллированной воды
Разделяющий раствор хранят на холоду в темной склянке с притертой пробкой.

Слайд 22

Выделение лимфоцитов
Гепаринизированную кровь в количестве 2—4 мл (100 ЕД гепарина на

1 мл) разводят средой Игла в соотношении 1 : 4 и 1 : 6 и осторожно наслаивают на 3—5 мл разделяющего раствора в центрифужных пробирках на 25 мл, центрифугируют 20—40 мин при 600 g и комнатной температуре. Лимфоциты скапливаются в виде белого слоя на границе разделяющего слоя и среды Игла. Их отбирают пастеровской пипеткой и трижды по 10 мин отмывают средой при комнатной температуре. Центрифугируют дважды при 600 g и 1 раз при 200 g для уменьшения примеси тромбоцитов. Концентрацию суспензии доводят до Зх109 клеток/л (среда Игла). Различные варианты контроля дают в среднем 93°/о лимфоцитов, 4% моноцитов, 3% гранулоцитов. Долю моноцитов можно снизить до 1 % и меньше по методу Gu, однако это для метода ЕАС-розеток не имеет особого значения.

Слайд 23

Сенсибилизация эритроцитов барана
ЭБ, смешанные с раствором Олсвера, осаждают центрифугированием и дважды

отмывают ФСБ или 0,15 NaCl. Ресуспендируют осадок в среде Игла и доводят гематокрит до 0,05. Сенсибилизацию ЭБ проводят инактивированием гемолизином кролика, разведенным до субагглютинирующей концентрации изотоническим буфером. Для получения оптимальных концентраций амбоцептора проверяют несколько степеней разведения, выраженных в титрах гемолизина.

Слайд 24

Наилучшие результаты получаются при разведении 1 : 500. При использовании инактивированных

кроличьих антисывороток к антигену Форссмана или ЭБ необходимые разведения не совпадают. Суспензию эритроцитов (гематокрит 0,05) смешивают с равным объемом разведенного амбоцептора и инкубируют в течение 30 мин при 37 °С на водяной бане. Суспензию эритроцитов в ходе инкубации многократно перемешивают. После инкубации сенсибилизированные ЭБ дважды отмывают в изотоническом буферном растворе, ресуспендируют в среде Игла и устанавливают гематокрит 0,05.

Слайд 25

Слайд 26

Среда Олсвера
р-р, предназначенный для сохранения эритроцитов. Состав: 24,6 г глюкозы, 9,6

г натрия цитрата, 5,04 г натрия хлорида, 1200 мл дистил. воды. Стерилизуют фильтрованием. Для консервации эритроцитов барана 1 ч. крови смешивают с 1 ч. О.р.; эритроцитов человека, морской свинки, кур - 5 ч. крови с 1 ч. О.р. Эритроциты пригодны в течение 8-12 дней. С этой целью также применяют азид натрия, боратный буфер с сорбитом, гипертонический р-р натрия хлорида, рН 6,0 - 6,4 (Ричардсона метод).

Слайд 27

Инкубация
Суспензию эритроциты — антитела — комплемент (ЕАС) с гематокритом 0,005 (0,5

мл) в центрифужных пробирках объемом 10 мл с 0,5 мл суспензии лимфоцитов инкубируют 15 мин при 37°С на водяной бане, периодически перемешивая. Затем центрифугируют 5 мин при 200 g и наконец суспендируют при комнатной температуре в роторе (10 качаний в минуту) или вручную (очень осторожно) .

Слайд 28

Оценка результатов
Клеточную суспензию (1—2 капли) наносят на сетку счетной камеры, используя

для этого пипетку с широким носиком. После наложения покровного стекла производят подсчет розеток» нерозеткообразующих мононуклеаров (микроскопия). За РОК принимают клетки, несущие три и более эритроцита на своей поверхности. Часто встречаются розетки в виде морулы.
Однако ее не следует путать с группами агглютинировавших эритроцитов, т. е. в центре морулы должна присутствовать ядерная клетка. Подсчитывают 200—300 клеток и вычисляют процент розеток. В норме ЕАС-розетки составляют 10— 20% клеток.

Слайд 29

Слайд 30

АНТИГЕНПРЕЗЕНТИРУЮЩИЕ КЛЕТКИ
Молекулы MHC контролируют иммунный ответ. Так, MHC-II участвуют в презентации антигенов

T-клеткам (рис. 7-3, 7-4) и во взаимодействии T- и B-лимфоцитов. Антигены MHC-I и MHC-II связываются с поверхностными маркёрами Т-клеток: MHC-I с CD8, а MHC-II - с CD4.

Слайд 31

Профессиональные АПК. Молекулы MHC-II экспрессированы только на определённых клетках, которые называют профессиональными

АПК. Таких клеток у человека 3 типа: ДК костномозгового происхождения (ДК), B-лимфоциты имакрофаги. На их мембранах, помимо молекул MHC-I и MHC-II, присутствуют все корецепторные молекулы, необходимые для презентации антигена Т-клеткам. Они продуцируют цитокины, необходимые для активации T-лимфоцитов и запуска иммунного ответа.

Слайд 32

Эндотелий тоже может выполнять функции АПК. Вероятно, экспрессия комплексов пептид-MHC на клетках

эндотелия служит специфическим сигналом, привлекающим эффекторные лимфоциты из циркуляции в очаг поражения, обеспечивая антигенспецифичный хоминг.

Слайд 33

Слайд 34

Разновидности ДК: Миелоидные
Происходят из моноцитов и экпрессируют маркёр CD11c Их, вероятно,

можно рассматривать как разновидность макрофагов, специализирующихся на презентации антигенов T-лимфоцитам.

Слайд 35

Слайд 36

Распознавание антигена рецептором T-лимфоцита. Каждая молекула MHC-II состоит двух цепей - α и β. При

помощи TCR T-клетка распознаёт антиген, но только находящийся в комплексе с молекулой MHC. В случае T-хелпера в процессе также участвует CD4, который свободным концом связывается с молекулой MHC. Распознаваемый T-клеткой антиген имеет 2 участка: один взаимодействует с молекулой MHC, другой (эпитоп) связывается с рецептором T-лимфоцита. Подобный же тип взаимодействия, но с участием CD8 характерен для процесса распознавания цитотоксическим T-лимфоцитом антигена, связанного с молекулой MHC-I.

Слайд 37

Разновидности ДК: Плазмоцитоидные ДК
происходят от общей лимфоидной клетки-предшественника, из которой развиваются

также T- и B-лимфоциты, NK-клетки. Маркёры предшественников плазмоцитоидных ДК: ИЛ-3Rα (вариант рецептора для ИЛ-3, или CD123), иммуноглобулиноподобные рецепторы - ILT3+ (CD85k) и ILT7+ (CD85g), а также BDCA-2 (CD303), BDCA-3 (CD141) и BDCA-4 (CD304).

Слайд 38

Эндоцитоз. ДК активно и непрерывно поглощают вещества из окружающей среды. При отсутствии

патогена ДК поглощают вещества собственных тканей и презентируют этот материал T-лимфоцитам без корецепторного стимула. В результате иммунный ответ в отношении собственных тканей не развивается и поддерживается состояние толерантности к «своему». ДК до активации представлены незрелыми формами, с низкой способностью презентировать антигены Т-лимфоцитам.

Слайд 39

Активация. ДК активируются (созревают) при проникновении патогена в организм и превращаются в

зрелые ДК. В распознавании патогена при этом участвует TLR.
- На миелоидных ДК, как и на макрофагах, присутствуют рецепторы для маннозы, ЛПС, а также TLR2 и TLR4, распознающие продукты грамотрицательных и грамположительных бактерий соответственно.
- На плазмоцитоидных ДК присутствуют TLR7 и TLR9 (распознают вирусную и бактериальную ДНК), а также особый лектиновый рецептор, который связывает, например, вирус гриппа

Слайд 40

Макрофаг-моноцит: Функция
фагоцитарная защита организма против микробной инфекции; токсический эффект метаболитов макрофагов

на паразитов в организме человека; участие в иммунном ответе организма и воспалении; регенерация тканей и противоопухолевая защита; регуляция гемопоэза; фагоцитоз старых и поврежденных клеток крови, регуляция продукции острофазных белков печенью.

Слайд 41

В тканях моноциты дифференцируются в тканевые макрофаги. Моноциты - макрофаги имеют

аэробный гликолиз, обеспечивающий энергией их фагоцитарную активность. Макрофаги функционируют также в анаэробных условиях (например, в полости абсцесса), используя для генерации энергии гликолитический путь. Макрофаги распознают микроорганизмы, поврежденные клетки, медиаторы, гормоны, лимфокины с помощью рецепторов своей плазменной мембраны.

Слайд 42

Цитотоксическое действие на опухолевые клетки, токсоплазмы (кокцидии, паразитические простейшие), лейшмании и

возбудителей малярии макрофаги оказывают супероксидом, перекисью водорода, гидроксильным радикалом и др.

Слайд 43

Макрофаги человека секретируют в кровь и тканевую жидкость более 100 биологически

активных веществ с молекулярной массой от 32 (анион супероксида) до 440 000 (фибронектин). Функция этих веществ: стимуляция пролиферации остеобластов и лимфоцитов, продукции фибробластами КСФ-ГМ (интерлейкин-1); регуляция гемопоэза и механизмов воспаления (КСФ-ГМ, КСФ-Г, эритропоэтин, простагландины, лейкотриены В, U, С, D, Е, тромбоксан); цитотоксический и цитостатический эффекты на опухолевые клетки (опухольнекротизирующий фактор — ОНФ). Наконец, интерлейкин-1 и ОНФ повышают температуру тела через терморегуляторные центры гипоталамуса.

Слайд 44

КОЛИЧЕСТВЕННОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ СУБПОПУЛЯЦИЙ ЛИМФОЦИТОВ КРОВИ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ

Слайд 45

ОБОСНОВАНИЕ
Подразделение лимфоцитов человека на Т-лимфоциты, В-лимфоциты и естественные киллеры основано на

их биологических функциях и на экспрессии ими поверхностных клеточных Аг, определение уровня которой называется фенотипированием. В основе метода лежит связывание флюоресцентно меченых моноклональных АТ поверхностными Аг лимфоцитов и учёт результатов с помощью проточного лазерного цитометра или люминесцентной микроскопии.

Слайд 46

ЦЕЛЬ
Подсчёт клеток определённой популяции, или спектра Аг, экспрессированных на данных клетках.

Слайд 47

ПОКАЗАНИЯ
Метод используют для количественной и качественной характеристики субпопуляционного состава лимфоцитов периферической

крови при наличии или подозрении на наличие иммунодефицитных состояний, развившихся на фоне воспалительных, гиперпластических и других процессов в органах женской репродуктивной системы.

Слайд 48

ПОДГОТОВКА
Из вены пациента берут кровь в пробирку с гепарином (20 Ед/мл).

Слайд 49

МЕТОДИКА
Кровь обрабатывают лизирующим раствором для разрушения эритроцитов или с помощью градиентного

центрифугирования выделяют фракцию мононуклеарных клеток. Суспензию клеток инкубируют в темноте 15–30 мин с соответствующими флюоресцентно мечеными моноклональными АТ. Результаты регистрируют на проточном цитометре или с помощью люминесцентного микроскопа в течение не более 6 ч. Лимфоциты, фиксированные 1% параформальдегидом, можно хранить при +2–8 °С не более 24 ч.

Слайд 50

ИНТЕРПРЕТАЦИЯ
Анализ позволяет оценить количество лимфоцитов в субпопуляции, результаты сопоставляют с нормативными

показателями, рассчитывают соотношение Т-хелперов и Т-цитотоксических лимфоцитов (иммунорегуляторный индекс), содержание активированных Т-лимфоцитов и др. Определение процентного соотношения Т-лимфоцитов, В-лимфоцитов и NK-клеток используют для характеристики иммунодефицитных и аутоиммунных состояний, опухолевых и вирусных заболеваний. Фенотипирование лимфоцитов применяют для подтверждения диагноза и мониторинга состояния иммунной системы пациентки в процессе лечения. Чувствительность и специфичность метода зависит от качества используемых реагентов.

Е-РОК - Тест розеткообразования — классический метод определения количества Тлимфоцитов в периферической крови

Содержание

Е-РОКТест розеткообразования — классический метод определения количества Т-лимфоцитов в периферической крови

Е-РОК: МатериалыМатериалы и оборудование. Для работы необходимы: 0,15 М NaCl, среда Игла-MEM

Получение лимфоцитовДля определения РОК необходимы лимфоциты, по возможности минимально загрязненные аутологическими

ИнкубацияИз трижды отмытых в 0,15 М NaCl ЭБ делают 0,5% суспензию

Оценка результатовВажным этапом является ресуспендирование осадка. Требуется определенный опыт, чтобы при

МодификацииСокращение используемых объемов крови достигается следующей модификацией: в пробирку вносят 200

Максимально АЭТ — ЭБ могут храниться в течение недели - при

Для реакции торможения розеткообразования используют суспензию лимфоцитов (4х106/мл) в среде Игла-MEM.

Известен микрометод определения РОК в планшетах Терасаки. Под слоем вазелинового масла

Е-Рок(проще)Кровь обследуемого пациента в количестве 10 мл вносят в пробирку с

Полученную смесь инкубируют при 37°С в течении 10 минут и снова

Определение активных Т-лимфоцитовАктивные Т-лимфоциты — это клетки, способные к спонтанному розеткообразованию

Определение субпопуляций Т-лимфоцитовОпределение субпопуляций Т-лимфоцитов основано на выявлении так называемых теофиллинчувствительных

Методика количественного определения Т-супрессоров и Т-хелперов мало отличается от описанного выше

Среда MEM (Minimum Essential Medium), или среда Игла была разработана Гари Иглом

Метод оценки В-лимфоцитовМетод ЕАС-розеток предназначен для выявления рецепторов к комплементу на

Материалы и оборудованиеСиликонизированные и центрифужные пробирки (25 и 10 мл), пастеровские

Цельную кровь барана, разведенную раствором Олсвера О + О. сохраняют до

Выделение лимфоцитовГепаринизированную кровь в количестве 2—4 мл (100 ЕД гепарина на

Сенсибилизация эритроцитов баранаЭБ, смешанные с раствором Олсвера, осаждают центрифугированием и дважды